Лечение геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС)

Содержание

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом — проблема современности | Бородина

1. Sanford H. Feldman, David N. Easton. Hemorrhagic Fever with Renal Syndrome 2006 [Electronic resource]. URL: https://www.sciencedirect.com/topics/pharmacology-toxicology-and-pharmaceutical-science/hemorrhagic-fever-with-renal-syndrome (date of the application: 10.06.2019)

2. Управление Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека РФ «Об эпидемиологической ситуации в мире по опасным инфекционным болезням, требующим проведения мероприятий по санитарной охране территории (по состоянию на 18.10.2017.)» [Электронный ресурс]. URL: http://58.rospotrebnadzor.ru/rss_all/-/asset_publisher/Kq6J/content/id/579652 (дата обращения: 10.06.2019).

3. Ткаченко Е.А., Дзагурова Т.К., Берштейн А.Д. и др. Современное состояние проблемы геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Национальные приоритеты России 2011;18-22.

4. Cohen Jonathan, William G. Powderly, Steven M. Opal. Infectious Diseases. ISBN 978-0-7020-6285-8; e-book 978-0-7020-6338-1. Elsiver Limited. 2017; 1763 р.

5. Jiaxin Ling Jenny Verner-Carlsson Per Eriksson Angelina Plyusnina, Mare Lohmus Josef D., Jarhult Frank van de Goot et al. Genetic analyses of Seoul hantavirus genome recovered from rats (Rattus norvegicus) in the Netherlands unveils diverse routes of spread into Europe. J Med Virol. 2019 May 15;91(5):724-730. Epub 2019 Jan 15.

6. Georges C.G., Artunc F., Weyrich P. et al. Nephropathia epidemica as the result of a Puumala virus infection in a pregnant patient. Dtsch. Med. Wochenschr. 2008; 133(37): 1830-1832.

7. Todorovic Z., Canovic P,, Gajovic O. et al. Hemorrhagic fever with renal syndrome during pregnancy: a case report. Med. Pregl. 2010; 63(3-4): 280-284.

8. Kim B.-N., Choi B.-D. Hemorrhagic fever with renal syndrome complicated with pregnancy: a case report. The Korean journal of internal medicine. 2006; 21(2): 150-153.

9. Ма R.M., Xiao H., Jing X.T., Lao T.T. Hemorrhagic fever with renal syndrome presenting with intrauterine fetal death. A case reports. J. Reprod. Med. 2003; 48(8): 661-664.

10. Schneider F., Vidal L., Auvray C. et al. The first French hemorrhagic fever with renal syndrome in pregnant women J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. 2009; 38(5): 440-442.

11. Mir M. Hantaviruses. Clin. Lab. Med. 2010; 30(1): 67-91.

12. Marcotic A. Clinic and laboratory findings of HFRS patients in SouthEast Europe. Abstracts of IX international conference of HFRS, HPS and hantaviruses. Beijing (China). 2013; 13 р.

13. Mustonen J., Makela S., Outinen T. et al. The pathogenesis of nephropathiaepidemica: new knowledge and unanswered questions. Antiviral Research. 2013; 100 (3): 589-604.

14. Kruger D.H., Schonrich G., Klempa B. Human pathogenic hantaviruses and prevention of infection/ Human Vaccines. 2011; 7(6): 685-693.

15. Wakeley J., Nielsen R., Liu-Cordero S.H., Ardlie K. The discovery of single-nucleotide polymorphism — and interference about human demographic history. Genet. 2001; 69: 1332-1347.

16. Yanagihasra R. Hantavirology: a story of rediscovery and new beginnings. Abstracts of IX international conference of HFRS, HPS and hantaviruses. Beijing (China). 2013; 1-2 p.

17. Pastissier A, Humbert S, Naudion P, Meaux-Ruault N, Badoz M, Magy-Bertrand N. Severe Sinus Bradycardia in Puumala virus infection Int J Infect Dis. 2018; 79:75-76

18. Hemorrhagic Fever with Renal Syndrome (HFRS). 2017 [Electronic resource]. URL: https://www.cdc.gov/hantavirus/hfrs/index.html (date of the application: 10.06.2019)

19. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2017 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. 2018; 143, 147-148.

20. Иванис В.А., Попов А.Ф., Томилка ГС., Фигрунов В.А. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом — проблема здравоохранения настоящего. Тихоокеанский медицинский журнал. 2015; 1: 21-25.

21. Хунафина Д.Х., Валишин Д.А., Шайхуллина Л.Р. и др. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (обзор литературы)). Международный журнал экспериментального образования. 2014; 8(1): 14-17.

22. Байгильдина А.А. Современные представления о патогенезе геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Медицинский вестник Башкортостана. 2014; 9(1): 98-108

23. Хасанова Г.М., Тутельян А.В., Валишин Д.А. Динамика содержания цитокинов у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом. Инфекц. болезни. 2011; 9(3): 31-34.

24. Сиротин Б.З. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом. Хабаровск. 1994; 302 с.

25. Иванис В.А. Клинико-патогенетические аспекты геморрагической лихорадки с почечным синдромом в Приморском крае. В кн.: Хантавирусы и хантавирусные инфекции. Под ред. Р.А. Слоновой и В.А. Иванис. Владивосток: 2003; 43-46.

26. Launay D., Thomas Ch., Fleury D. et al. Pulmonary-renal syndrome due to hemorrhagic fever with renal syndrome: an unusual manifestation of Puumala virus infection in France. Clin. Nephrol. 2003; 59(4): 297-300.

27. Сарксян Д.С. Клиническое значение показателей функционального состояния легких при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. автореф. дис. канд. мед. наук. 2007; 26.

28. Rasmuson J., Andersson Ch., Norrman E. et al. Hantavirus Pulmonary syndrome caused by European Puumala Hantavirus. VIII International conference on HFRS, HPS & Hantaviruses. Athens, Greece. 2010; 158.

29. Постановление Государственного Совета Удмуртской Республики от 28. 09. 2004 г. № 284-III. Государственного Совета Удмуртской Республики. [Электронный ресурс]. URL: https://www.lawmix.ru/zakonodatelstvo/1535058 (дата обращения: 10.06.2019).

30. Сиротин Б.З., Федорченко Ю.Л., Давыдович И.М. Вопросы патогенеза и патогенетической терапии геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Терапевтический архив. 1995; 67(11): 30-33.

31. Сиротин, Б.З. Жарский С.Л., Ткаченко Е.А. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (последствия, их диагностика и классификация, диспансеризация переболевших). Хабаровск: Риотип. 2002; 128 с.

32. Сиротин, Б.З., Тен Т.К. Патология гипофиза при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. Нефрология. 2002; 6(1): 29-34.

33. Новикова Л.Б., Бурашникова Ю.А., Суворов А.Г. Лечение неврологических осложнений у реконвалесцентов геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Дальневосточный медицинский журнал. 2003; 3: 80-81.

34. Новикова Л.Б. Церебральные нарушения при геморрагической лихорадке с почечным синдромом в Башкортостане. Автореф. дис. . д-ра мед. наук. Пермь. 2000; 41 с.

35. Ситникова М.Ю. и др. О взаимосвязи маркеров эндотелиальной дисфункции и почечной гемодинамики у больных сердечной недостаточностью и влияние на них длительной терапии периндо-прилом. Клиническая фармакология и терапия. 2001; 10 (1): 49-52.

36. Иванис В.А. Клинико-патогенетические аспекты геморрагической лихорадки с почечным синдромом в Приморском крае. В кн.: Хантавирусы и хантавирусные инфекции. Под ред. Р.А. Слоновой и В.А. Иванис. Владивосток: 2003; 212-239.

37. Шутов A.M., Шутова Л.А., Шапиро Г.Р. Гемодиализ и лечение острой почечной недостаточности при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. Терапевтический архив. 1996; 68(6): 31-32.

38. Шутов A.M. Острая почечная недостаточность при геморрагической лихорадке с почечным синдромом: автореф. дис... д-ра мед. наук. 1997; 44 с.

39. Эшмаков С.В. Клинико-функциональное состояние системы кровообращения у реконвалесцентов геморрагической лихорадки с почечным синдромом: Автореф. дис... канд. мед. наук. Ижевск. 2003; 24 с.

40. Мухетдипова Г.А. Клинико-патогенетические особенности поражения легких и сердца у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом. Автореф. дис... д-ра мед. наук. Москва. 2013; 230 с.

41. Валишин, Д.А., Андриянова О. Л. Эндокринные нарушения у больных ГЛПС Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: актуальные проблемы эпидемиологии, патогенеза, диагностики, лечения и профилактики. Уфа: Гилем. 2006; 132-142.

42. Бородина Ж.И., Давыдова Л.А., Поздеева Т.Г. и др. Клинико-Морфологическое обоснование участия кишечных токсинов в патогенезе геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Здоровье, демография, экология Финно-угорских народов. 2017; 1: 52-55. Borodina

43. Бородина Ж.И. Некоторые клинико-патогенетические аспекты интоксикации при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. Автореф. дис... канд. мед. наук. 2018; 23 с.

44. Бородина Ж.И., Каменщикова Т.М., Малинин ОВ. и др. Значение содержания веществ низкой и средней молекулярной массы в патогенезе интоксикации при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. Медицинский вестник Башкортостана. 2017; 6 (72): 11-15.

45. Каменщикова Т.М., Бородина Ж.И. Характеристика поражений печени при геморрагической лихорадке с почечным синдромом. Материалы 3 Ежегодного Всероссийского Конгресса по инфекционным болезням. Москва. 2011; 156.

46. Малых Е.В., Николаева Н.В., Бородина Ж.И. и др. Клиническая характеристика стертых и атипичных форм ГЛПС. Труды Ижевской государственной медицинской академии. Ижевск. 2002; 267 с.

47. Сарксян Д.С., Малинин О.В., Бородина Ж.И. Информативность определения сиаловых кислот в эритроцитах для оценки гемореологических нарушений при ГЛПС. Дальневосточный медицинский журнал. 2003; 3: 111.

48. Малеев, В.В., Мартынов В.А., Клочков И.Н. Клинико-эндоскопическая характеристика острой эрозивно-язвенной патологии верхних отделов ЖКТ у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом, лептоспирозом и туляремией. Рос. мед.-биол. вестн. им. акад. И.П. Павлова. 2014; 3: 48-55.

49. Информационное письмо для врачей терапевтов, инфекционистов, анестезиологов-реаниматологов, нефрологов, врачей и фельдшеров скорой медицинской помощи. Диагностика лечение осложнений геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Министерство здравоохранения Удмуртской Республики. Электронный ресурс]. URL: https://pandia.ru/text/81/574/45129.php (дата обращения: 10.06.2019).

50. Dreshaj S., Ajazaj L., Hasani N. et al. A Nonfatal Case of Dobrava Hantavirus Hemorrhagic Fever with Renal Syndrome Combined with Hantavirus Cardiopulmonary Syndrome. 2018; 22-25.

51. Shimizu K., Yoshimatsu K., Taruishi M. et al. Involvement of CD8+T cells in the development of renal hemorrhage in a mouse model of hemorrhagic fever with renal syndrome. Medical virology. 2018; 163: 1577-1584.

52. Llah S.T., Mir S., Sharif S. et al. Hantavirus induced cardiopulmonary syndrome: A public health concern. Journal of medical virology. 2018 Jun; [PubMed PMID: 29446472]

53. Malinin O.V., Platonov A.E. Insufficient efficacy and safety of intravenous ribavirin in treatment of haemorrhagic fever with renal syndrome caused by Puumala virus. Infectious diseases. 2017; 49(7): 514-520

54. Moreli M.L., Marques-Silva A.C., Pimentel V.A. et al. Effectiveness of the ribavirin in treatment of hantavirus infections in the Americas and Eurasia: a meta-analysis. Virusdisease. 2014; 25(3):385-389

Геморрагические лихорадки

Геморрагические лихорадки

Геморрагические лихорадки – это группа острых инфекционных заболеваний, вызванных представителями четырех видов вирусов: аренавирусами, буньявирусами, флавивирусами и филовирусами. Общим для этих заболеваний является тяжелая интоксикация и характерный тромбогеморрагический синдром.

Вирусы, вызывающие геморрагические лихорадки, широко распространены во многих странах мира. Некоторые встречаются и в развитых странах, однако эндемичными районами для большинства видов возбудителей являются Африка, Азия и Южная Америка.

Течение геморрагической лихорадки, в зависимости от возбудителя, может варьироваться от умеренного до крайне тяжелого. Смертность от отдельных вариантов инфекции составляет от 10 до 90  %. Определенные варианты геморрагической лихорадки приводят к тяжелому поражению внутренних органов и нередко к летальному исходу.

Прогноз заболевания зависит от типа вируса, возраста и общего состояния пациента, в частности от активности его иммунной системы.

Синонимы английские

Viral hemorrhagic fevers, hemorrhagicfevers, VHF, VHFs.

Симптомы

Симптомы геморрагических лихорадок различаются в зависимости от типа вируса, вызвавшего заболевание. Общими проявлениями для всех инфекций являются сама сильная лихорадка и повышенная кровоточивость. Симптомы в начальной стадии болезни чаще всего неспецифичны, однако в процессе дальнейшего развития патологического процесса могут появляться признаки поражения определенных органов и систем организма.

Основные симптомы геморрагических лихорадок:

  • лихорадка;
  • слабость, головокружение;
  • мышечные боли;
  • гиперемия кожи;
  • петехиальная сыпь на коже и слизистых оболочках;
  • нарушение сознания;
  • покраснение глаз;
  • кровь в стуле, рвота с кровью;
  • падение артериального давления.

Общая информация о заболевании

Геморрагические лихорадки могут быть вызваны представителями четырех семейств РНКсодержащих вирусов: аренавирусами (Arenaviridae), буньявирусами (Bunyaviridae), филовирусами (Filoviridae) и флавивирусами (Flaviviridae). Аренавирусы вызывают лихорадку Ласса, аргентинскую, бразильскую, венесуэльскую и боливийскую лихорадку, буньявирусы – лихорадку Крым-Конго, лихорадку долины Рифт, геморрагическую лихорадку с почечным синдромом, филовирусы – лихорадку Эбола, флавивирусы – желтую лихорадку, лихорадку Денге и др.

"Резервуарами" вирусов служат некоторые животные и насекомые, чаще всего мелкие грызуны, летучие мыши, москиты, клещи. Как правило, определенные типы геморрагических лихорадок встречаются в основном на территории обитания тех животных, которые являются источником конкретного возбудителя. Например, источник вируса лихорадки долины Рифт, которая распространена на территории Африки, – это москиты. Геморрагическая лихорадка Крым-Конго встречается в Европе, Азии, Африке, ее распространяют клещи. Источник некоторых заболеваний, например лихорадки Эбола, остается неизвестен, предполагают, что им могут быть летучие мыши. Некоторые типы вирусов передаются через кровь или семенную жидкость зараженного животного или человека, через нестерильные иглы. Определенными возбудителями геморрагических лихорадок можно инфицироваться при вдыхании микрочастиц фекалий и мочи животных-переносчиков.

Все представители вирусов, вызывающих геморрагические лихорадки, объединены общим патогенезом. Они склонны поражать эндотелий сосудов, что объясняет развитие геморрагического синдрома при большинстве геморрагических лихорадок. После проникновения вируса в кровь через укусы насекомых, расчесы, ссадины, инъекции, слизистую дыхательных путей сначала формируется локальная реакция на инфекцию, вслед за которой быстро развивается вирусемия и генерализованное поражение системы микроциркуляции (вирус поражает также клетки сосудистой стенки). При проникновении возбудителя в кровь он прилипает к мембране клетки, проникает внутрь нее, активно размножается и распространяется по другим тканям организма. Это сопровождается выделением биологически активных веществ, которые нарушают проницаемость сосудов, реологические свойства крови. Проявлением этого процесса является сыпь, гиперемия кожи, покраснение сосудов склер, могут возникать внутренние кровотечения, сопровождаемые резким падением артериального давления, шоком. Ряд вирусов вызывает поражение костного мозга, в частности мегакариоцитов. Ослабление иммунной системы организма, слабый или запоздалый ответ защитных механизмов может приводить к стремительному развитию патологического процесса, сопровождаемому массивными кровотечениями, полиорганным поражением.

Кто в группе риска?

  • Работающие с инфицированными людьми или животными, в частности медицинские работники, биологи, дератизаторы, работники скотоводческих ферм.
  • Проживающие в эндемичных районах.
  • Употребляющие внутривенные наркотики.
  • Те, кто пренебрегает барьерными способами контрацепции.

Диагностика

Диагностика основана на анамнезе, осмотре, результатах лабораторных и инструментальных исследований. При опросе пациента обращается внимание на возможный контакт с возбудителем – путешествие в эндемичные по заболеванию регионы, контакт с животными-переносчиками или инфицированными людьми. Инкубационный период большинства геморрагических лихорадок составляет 10-21 день, поэтому болезнь может развиться уже после возвращения из путешествия в опасный район. При подозрении на наличие геморрагической лихорадки необходимо в условиях стационара в кратчайшие сроки провести ряд исследований, позволяющих дифференцировать болезнь от других заболеваний и установить тип возбудителя:

Все диагностические манипуляции следует выполнять с особой осторожностью в связи с высокой болезнетворностью возбудителей.

Лечение

Лечение данной группы заболеваний должно проводиться в условиях стационара. Специфическая терапия большинства возбудителей геморрагических лихорадок отсутствует. Лечебная тактика определяется состоянием пациента и направлена на поддержание жизненных функций и предотвращение возможных осложнений. Такие противовирусные препараты, как рибавирин, могут снизить активность возбудителя.

Профилактика

  •          Контроль популяции мелких грызунов;
  •          использование средств индивидуальной защиты против укусов москитов, клещей;
  •          своевременная вакцинация против определенных видов геморрагических лихорадок, например желтой лихорадки, перед посещением эндемичных районов;
  •          соблюдение гигиенических правил.

Рекомендуемые анализы

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом

В Беларуси ежегодно болеют ГЛПС от одного до девяти человек. На начало 2012 года в Беларуси зарегистрировано 522 очага ГЛПС. Поражённость мышевидных грызунов возбудителем ГЛПС составила 1,3% (от 0,9% в Минской до 4,7% в Могилевской областях).

ГЛПС – острая вирусная болезнь человека. Характеризуется поражением кровеносных сосудов почек. Инфекция вызывается вирусами рода Hantavirus, их переносчиками выступают лесные и полевые мыши. Вирус выделяется в окружающую среду со слюной и испражнениями грызунов.

Заражение человека происходит при вдыхании воздуха, загрязненного частицами высохших выделений мышей, возможен пищевой путь заражения — через продукты питания и при контакте с животным

Чаще всего природные очаги инфекции расположены по берегам водоёмов, во влажных лесных массивах с высокой травой.

В группу риска попадают любители охоты, рыбалки, туристических походов

Заболеваемость ГЛПС чаще регистрируется с мая по декабрь, хотя единичные случаи болезни могут случиться и в другие месяцы.

Восприимчивость людей к заболеванию при контакте с вирусом высокая. Однако следует помнить, что человек, больной ГЛПС, для окружающих не заразен.

Перенесенная инфекция оставляет после себя стойкий пожизненный иммунитет.

Инкубационный период (от момента заражения до появления первых симптомов) составляет от 7 до 46 дней (чаще 2-3 недели). Заболевание начинается остро с лихорадки до 38–40°С и выше, сопровождающейся ознобом и чувством жара, сильной головной болью, слабостью, отсутствием аппетита, ломотой во всём теле, болями в мышцах, тошнотой, рвотой и другими проявлениями выраженной интоксикации. Характерен внешний вид больного: он заторможен, предпочитает лежать на спине; лицо, глаза, шея, верхняя часть грудной клетки – покрасневшие.

Высокая температура тела сохраняется в течение 3–5 дней, в это же время начинают появляться боли в животе и поясничной области, которые со временем только усиливаются. В дальнейшем, несмотря на нормализацию температуры, состояние больного лишь ухудшается, появляются кровоизлияния на коже, носовые кровотечения, кровоизлияния в склеры, кровь в моче, снижается количество суточной мочи. Пораженные вирусом ГЛПС кровеносные сосуды становятся высоко проницаемыми, происходит выход плазмы — жидкой части крови — в окружающие ткани. Сама же кровь сгущается, нарушается работа ее свертывающей системы. В большей степени страдают сосуды почек, развивается острая почечная недостаточность, возможет даже разрыв почки.

При оказании квалифицированной медицинской помощи в условиях стационара вышеуказанные проявления заболевания постепенно начинают исчезать, после 4 недели болезни наступает выздоровление.

ГЛПС может приводить к развитию ряда потенциально опасных для жизни осложнений, поэтому чрезвычайно важно своевременно обратиться за медицинской помощью при подозрении на заражение данной инфекцией!

Профилактика - защита от грызунов при нахождении на природе!

Благоустройство лесопарковой территории

Уничтожение грызунов в очагах инфекции

Защита людей от соприкосновения с грызунами или предметами, загрязнёнными их выделениями.

Не рекомендуется отдыхать в траве!

Запасы продуктов необходимо хранить в недоступных для грызунов местах!

Высоцкая В.С.

ЦГиЭ Московского района

ГЛПС: симптомы, лечение, профилактика :: Здоровье :: РБК Стиль

Статью проверила и прокомментировала Анна Цыганкова, старший врач-консультант медицинской компании BestDoctor

Что такое ГЛПС

ГЛПС (геморрагическая лихорадка с почечным синдромом ) — острое вирусное заболевание, которое характеризуется высокой температурой, сильной интоксикацией, геморрагическим синдромом и поражением почек.

Заболевание вызывают хантавирусы семейства Bunyaviridae. По месту распространения такая лихорадка также известна как дальневосточная, маньчжурская, корейская, уральская, закарпатская, тульская и ярославская. Ее также называют мышиной лихорадкой и болезнью Чурилова.

В России заболевание выявили в 1935–1939 годах врачи Чурилов и Цыганков у военных, служивших на Дальнем Востоке. Вирусная природа заболевания стала понятна сразу, но обнаружить возбудитель удалось лишь в 1976 году, когда южнокорейские ученые нашли вирус Хантаан (Hantaan) у полевых мышей.

Позднее аналогичные вирусы выявлены по всему миру. Хантавирус распространен в Восточной Азии (Китай, Корея, Россия). Вирус Пуумала — в Скандинавии, Западной Европе и России. Вирус Добрава обнаружен на Балканах, Сааремаа — в Центральной Европе и Скандинавии, а вирус Сеула распространен по всему миру.

Как происходит заражение ГЛПС

ГЛПС — зоонозная (передающаяся от животных) инфекция. Хантавирусы переносят и передают человеку грызуны. Заразиться этими вирусами можно после контакта с продуктами жизнедеятельности, которые содержат следы слюны или экскрементов инфицированных животных. Основным способом заражения считается воздушно-пылевой, при котором вирус, содержащийся в выделениях грызунов, в виде аэрозоля попадает через верхние дыхательные пути в легкие человека.

Вирус также передается, когда возбудители попадают на поврежденную кожу или на слизистые оболочки глаз, носа или рта. Люди могут подвергаться воздействию хантавирусов через укусы животных. Можно заразиться, если употреблять в пищу продукты, в которые каким-то образом попали экскременты грызунов. А вот передача вируса от одного человека к другому происходит крайне редко: как правило, инфицированный человек опасности для других не представляет [1].

Переносчики вирусов

Основные переносчики вирусов, вызывающих у человека ГЛПС, — это грызуны. Самые распространенные из них: полевая мышь (переносит вирусы Сааремаа и Хантаан), коричневая или норвежская крыса (сеульский вирус), рыжая полевка (вирус Пуумала) и желтошейная полевка (вирус Добрава). Кроме того, вирусы переносят серая и черная крысы и серые мыши-полевки.

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом в России считается одной из самых распространенных болезней, вызванных природно-очаговыми инфекциями [2]. Она лидирует по уровню заболеваемости и распространению, ГЛПС выявлена более чем в 60 регионах страны. Вирусологи отмечают эпидемические вспышки летом и осенью, во время туристического сезона. Чаще остальных ГПЛС болеют мужчины в возрасте 20–40 лет.

Симптомы ГЛПС

После того, как вирус проник в организм человека, он локализуется и накапливается в эпителии сосудов и некоторых органах. Затем он попадает в кровь, этот момент совпадает с началом болезни и появлением синдрома интоксикации.

Симптомы ГЛПС обычно развиваются в течение одной-двух недель после контакта с инфекцией, в редких случаях для их развития может потребоваться до восьми недель. Вот основные признаки заболевания:

  • Сильная головная боль, боли в спине и животе, конечностях, области почек, лихорадка, озноб, тошнота, нарушения зрения. Основной симптом — резкое повышение температуры тела до 39–41 градусов. Первоначальные симптомы появляются внезапно. Часто можно наблюдать покраснение лица, воспаление или покраснение глаз и сыпь. Иногда чувствуются вялость, повышенная утомляемость, першение в горле.
  • На второй или третий день болезни на мягком нёбе появляется геморрагическая сыпь (энантема), а еще через пару дней — петехиальная (в виде точечных кровоизлияний) сыпь на лице, шее, груди и в подмышечных впадинах, иногда в виде характерных полос по типу удара хлыстом.
  • Более поздние симптомы могут включать в себя появление на коже гематом, резкое понижение или повышение кровяного давления, острую почечную недостаточность, боли в поясничной области и частую рвоту, приводящую к обезвоживанию организма.

Тяжесть симптомов зависит от вируса, вызывающего болезнь. Считается, что Хантаан и Добрава вызывают тяжелые симптомы, а вирусы Сааремаа, Пуумала Сеула — умеренные.

Стадии ГЛПС

У геморрагической лихорадки выделяют четыре стадии:

  • лихорадочная;
  • олигурическая;
  • полиурическая;
  • реконвалесценция.

Для течения болезни характерна цикличность. Первая (начальная) стадия длится два-три дня и сопровождается резким повышением температуры, появлением и развитием симптомов интоксикации.

Во второй стадии температура снижается, но состояние при этом ухудшается. Усиливаются боли в пояснице, развивается олигурия (уменьшение количества выделяемой мочи), проявляется геморрагический синдром. На этой стадии может нарушаться работа сердечно-сосудистой системы: снижение пульса, резкие скачки кровяного давления. В олигурический период пациентам нужно опасаться серьезных осложнений, таких как острая почечная и надпочечниковая недостаточности.

Примерно через две недели (на 9–14 день) наступает третья стадия, когда состояние больного улучшается. Диурез постепенно восстанавливается и компенсаторно увеличивается (больные могут выделять до 8–10 литров мочи в день), прекращается рвота, уменьшаются боли. Пациенты часто испытывают жажду, слабость и частую одышку.

На четвертой стадии (реконвалесценции) начинается восстановление всех функций организма. Полное выздоровление может занять от нескольких месяцев до полугода.

Диагностика ГЛПС

Диагностировать ГПЛС у человека, который был инфицирован несколько дней, сложно: ранние симптомы, такие как повышение, мышечные боли и усталость, легко спутать с другими заболеваниями. Например, с гриппом. Но если человек испытывает усталость и лихорадку и при этом потенциально контактировал с грызунами, это может указывать на наличие инфекции. При появлении первых симптомов заболевания следует немедленно обратиться к врачу и сообщить о возможном контакте с грызунами или продуктами их жизнедеятельности.

Сейчас для проведения ранней диагностики ГЛПС в России разработаны тесты на основе ПЦР. При обнаружении фрагментов вирусной РНК в крови они позволяют выявлять вирус с первого дня заболевания [3].

Лечение ГЛПС

Специфического лечения от хантавирусной инфекции нет. Но если обнаружить болезнь на ранней стадии и своевременно получить медицинскую помощь, можно быстро поправиться. Чем раньше пациент обратится ко врачу, тем лучше.

Больных ГЛПС помещают в инфекционный стационар независимо от тяжести заболевания. Амбулаторное наблюдение и лечение людей с подозрением на ГЛПС недопустимо.

Основа лечения пациентов с ГЛПС — поддерживающая терапия. Это включает контроль уровня жидкости и электролитов (натрия, калия), поддержание оптимального уровня кислорода и артериального давления, а также лечение возможных вторичных инфекций. В фазу острой почечной недостаточности может потребоваться заместительная почечная терапия — гемодиализ.

Чтобы снизить тяжесть течения заболевания и уменьшить риск развития осложнений на ранней стадии (в первые четыре дня), используют противовирусный препарат рибавирин [4].

Профилактика ГЛПС

Основной способ предотвращения хантавирусных инфекций — это борьба с грызунами. По возможности нужно контролировать их популяции вблизи дома или дачи и не допускать их проникновения внутрь. Необходимо избегать контакта с животными и продуктами их жизнедеятельности. При уборке и дезинфекции помещений, зараженных грызунами, соблюдать меры безопасности, надевать маску и перчатки.

Люди, переболевшие геморрагической лихорадкой с почечным синдромом, приобретают стойкий иммунитет к болезни, случаев повторного заражения врачи не зафиксировали.

Вакцины против штаммов хантавируса пока используют только в Китае и Корее. В России совместно с корейскими учеными разрабатывается бивалентная вакцина, она объединяет европейский и азиатский штаммы. Но препарат еще не прошел всех необходимых испытаний [3].

Комментарий врача

Анна Цыганкова, старший врач-консультант медицинской компании BestDoctor

При каких симптомах нужно незамедлительно обратиться к врачу?

В начале болезни симптомы напоминают грипп. Беспокоят общие жалобы на лихорадку, которая сопровождается слабостью, головной и мышечной болью. Поскольку эта лихорадка геморрагическая, может быть конъюнктивит, мелкоточечная сыпь по типу кровоизлияний на коже и слизистых. В последующие дни может присоединиться боль в пояснице и нарушения зрения — по типу тумана или сетки перед глазами. Резко возникшее нарушение зрения — всегда повод незамедлительно обратиться к врачу. Самый опасный этап болезни — второй, когда на 5–11 сутки уменьшается количество мочи. Это должно насторожить пациента.

Но стоит помнить, что на фоне лихорадки часть жидкости уходит с потом через кожу и количество мочи уменьшается. Если пациент активно пьет и при этом стал выделять меньше мочи — это повод обратиться к доктору. Особенно если за последний месяц-два был на даче, в частном доме, а также знает о факте возможного контакта с грызунами.

Каковы возможные последствия? Осложнения?

Самое опасное осложнение — это почечная недостаточность. Если пациент вовремя обратился за медицинской помощью, она обратима. Может потребоваться заместительная почечная терапия — гемодиализ, его проводят в отделении реанимации, а затем постепенно функция почек восстанавливается. Также может развиваться гепатит, кровоизлияния в различные органы, что может нарушить их функцию.

ГЕМОРРАГИЧЕСКАЯ ЛИХОРАДКА С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ НА ЮГЕ ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА РОССИИ: АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ДИАГНОСТИКИ И ТЕРАПИИ | Иванис

1. Jonsson CB, Figueiredo LTM, Vapalahti O.A Global Perspective on Hantavirus Ecology, Epidemiology and Disease. Clinical Microbiology Reviews. 2010; 23(2):412-441

2. Tkachenko EA, Bernshtein AD, Dzagurova TK et all. J. Microbiologii, Epidemiologii i Immunobiologii. 2013; 1:51-58 (in Russian).

3. Dzagurova TK, Tkachenko EA, Yunicheva VG et all. J. Microbiologii, Epidemiologii I Immunobiologii. 2008; 1:12-16 (in Russian).

4. Slonova RA, Kushnareva TV, Kompanets GG et al. J. Epidemioligii i Microbiologii. 2006; 3:74-77 (in Russian).

5. Yashina LN. Genetisheskoe raznoobrazie hantavirusov v populiatsiyh grizunov i nasekomoiadnyh asiatskoj chasti Rossii [Genetic diversity of Hantaviruses in Rodents and Insectivores populations of Russia Asiatic part] [dissertation]. Novosibirsk (Russia): Gosudarstvennyj naushnij centr virusologii i biotechnologii «Vector»; 2012. 49 с. (in Russian).

6. Kariwa H, Yoshikawa K, Tanikawa Y et al. Isolation and Characterization of Hantaviruses in Far East Russia and Etiology of Hemorrhagic fever with Renal Syndrome in the Region. Am. J. Trop. Med. 2012; 86(3):545-553.

7. Kushnareva T.V., Slonova R.A. Sibirskij ekologicheskij jurnal. – 2014. – Vol. 7, Iss. 1. – P. 19-25. DOI: 10.1134/S1995425514010090 (http://link.springer.com/article/10.1134/S1995425514010090) (in Russian).

8. Maksema IG, Kompanets GG, Iunihina et al. Tichookeanskij med. Jurnal. 2010; 3: 43-45 (in Russian).

9. Kompanets GG, Maksema IG, Iunihina OV, Kushnareva TV et al. Tichookeanskij med. Jurnal. 2010; 3: 40-43.

10. Ivanis V.A. Immunopathogenes, klinika, immunocorregiruyuschaya terapiya hemorragicheskoi lihoradki s pochechnim sindromom (HLPS) v regione cirkulyacii raznih serotipov hantavirusov [Immunopathogenesis, clinical, immunocorrection treatment of hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) in region of different serotypes hantaviruses circulation] [dissertation]. Vladivostok (Russia):Vladivostok Medical University; 2004. 334 p. (in Russian)

11. Mir M. Hantaviruses. Clin. Lab. Med. 2010; 30(1):67-91.

12. Klempa B, Avsic-Zupan T, Clement J et al. Complex evolution and epidemiology of Dobrava-Belgrade hantavirus: definition of genotipes and their characteristics. Arch irology. 2013; 158(3):521-529.

13. Dzagurova T.K. Hemorragicheskaya lihoradka s pochechnim sindromom (etiologiya, specificheskaya laboratornaya diagnostika, razrabotka specificheskih vaktsinnih preparatov) [Hemorrhagic fever with renal syndrome (etiology, specific laboratory diagnostics, development of diagnostic and vaccines preparations)] [dissertation]. Moscow (Russia): Institut poliomielita I virushnyh encefalitov [Instituyte of Poliomyelitis and Viral Encephalitis]; 2014. 47 p. (in Russian)

14. Manigold T, Vial P. Human hantavirus infections: epidemiology, clinical features, pathogenesis and immunology. Swiss Medical Weekly. 2014; 144: w13937.

15. Marcotic A. Clinic and Laboratory Findings of HFRS Patients in South-East Europe / Abstracts of IX international conference of HFRS, HPS and hantaviruses: Beijing, China. 7 June, 2013. P. 13.

16. Clement I, Maes P, Vergote V et al. HFRS in the New, and HPS in the Old World: Paradi(se)gm lost – or regained / Abstracts of IX international conference of HFRS, HPS and hantaviruses: Beijing, China. 7 June, 2013. P. 4.

17. Hartline J, Mierek C, Knutson T, Kang C. Hantavirus infection in North America: a clinical review. Am J Emerg Med. 2013 Jun; 31(6):978-982.

18. Kushnareva TV, Slonova RA, Kompanets GG, inventors; Sposob polusheniya diagnostikuma hantavirusov. Russian Federation patent RU 2180754С2; 2002. Bull.8 (in Russia).

19. Rang A. Modulation of innate immune responses by hantaviruses. Crit Rev Immunol. 2010; 30(6):515-527.

20. Kaya S. Prognostic factors in hantavirus infections. Mikrobiol Bul. 2014

21. Jan; 48(1):179-187.

22. Avsic-Zupanc T. Hantavirus diseases.G Ital Nefrol. 2012 Sep; Suppl 56:13-20.

23. Spiropoulou CF, Srikiatkhachorn A. The role of endothelial activation in dengue hemorrhagic fever and hantavirus pulmonary syndrome. Virulence. 2013 Aug 15; 4(6):525-536.

24. Mustonen J, Mäkelä S, Outinen T et al. The pathogenesis of nephropathia epidemica: new knowledge and unanswered questions. Antiviral Res. 2013 Dec; 100(3):589-604.

25. Oldstone MB, Rosen H. Cytokine Storm Plays a Direct Role in the Morbidity and Mortality from Influenza Virus Infection and is Chemically Treatable with a Single Sphingosine-1-Phosphate Agonist Molecule. Curr Top Microbiol Immunol. 2014; 378:129-147.

26. Pereverten LY. Sostouanie mestnoi I sistemnoi zacthiti pri hemorrhagicheskoi lishoradke s pochechnim sindromom, obuslovlennoi virusom serotipa Seul. [Condition of local and systemic ptotection under hemorrhagic fever with renal syndrome, associated with Seoul serotype] [dissertation]. Vladivostok (Russia):Vladivostok Medical University; 2005. 20 p. (in Russia).

27. Verkhoturova VI. Kliniko-immunologisheskaya harakteristika gemokoagulyacionnih narushenyi i ih znachenie v patogeneze hemorragicheskoi lihoradki s pochechnim sindromom [Clinical-immunological characteristics of Hemocoagulation in fringements and theirs meaning in hemorrhagic fever with renal syndrome pathogenesis] [dissertation ]. Vladivostok (Russia): Pacific Medical University; 2013. 22 p (in Russia).

28. Kushnareva TY, Maksema IG. Sovremennie problemi nauki I obrazovaniya 2015; 3; URL:www.science-education. ru/123-18370 (in Russian).

29. Mackow ER, Gavrilovskaya IN. Hantavirus regulation of endothelial cell functions. Thromb Haemost. 2009 Dec; 102(6):1030-1041.

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом у ребенка раннего возраста | Иванов

1. Валишин, Д.А. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом / Д.А. Валишин, Ю.Я. Венгеров // Инфекционные болезни: национальное руководство / под ред. Н.Д. Ющука, Ю.Я. Венгерова. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. – С. 835–843.

2. Некоммерческое партнерство «Национальное научное общество инфекционистов» Клинические рекомендации «Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом у взрослых» Утверждены решением пленума правления Национального научного общества инфекционистов 30 октября 2014 года. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://www.minzdravrb.ru/minzdrav/docs/glps.pdf (дата обращения 7.06.2020).

3. Евсеев, А.Н. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом. Пато- и морфогенез, макро- и микроскопическое исследование / А.Н. Евсеев. – Хабаровск: ОмегаПресс, 2010. – 293 c.

4. Геморрагические и риккетсиозные лихорадки: учебно-методическое пособие для студентов лечебного факультета / под ред. проф. В.Н. Тимченко. – СПб.: ГПМА, 2000. – 27 c.

5. Инфекционные болезни у детей : учебник для педиатрических факультетов мед. вузов (4е изд., испр. и доп.) / И.Д. Анненкова [и др.]; под ред. проф. В.Н. Тимченко. – СПб.: СпецЛит, 2012. – 623 с.

6. Любушкина, А.B. Прогнозирование тяжести геморрагической лихорадки с почечным синдромом / А.B. Любушкина [и др.] // Журнал инфектологии. – 2019. – Т. 11, № 2. – С. 35–39.

7. Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Управление Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека по городу Санкт-Петербургу : Государственный доклад «О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Санкт-Петербурге в 2019 году». [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://78.rospotrebnadzor.ru/c/document_library/get_file?uuid=6bdd63c5-19bc-4526-8548- 6f6a2c58b09c&groupId=935484 (дата обращения 29.07.2020).

8. Федеральная Служба по Надзору в Сфере Защиты Прав Потребителей и Благополучия Человека. Управление Роспотребнадзора по Ленинградской области // «Материалы к государственному докладу О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Ленинградской области в 2019 году» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://47.rospotrebnadzor.ru/sites/default/files/materialy_k_gosdokladu_leningradskaya_oblast_v_2019_g.pdf (дата обращения 29.07.2020).

9. Савицкая, Т.А. Обзор современной эпидемиологической обстановки по заболеваемости геморрагической лихорадкой с почечным синдромом в мире и прогноз заболеваемости на территории Российской Федерации в 2019 г. / Т.А. Савицкая [и др.] // Проблемы особо опасных инфекций. 2019. – № 2. – С 30-36. [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-2-30-36 (дата обращения 7.06.2020).

10. Свистунова, Н.В. Клинический случай сочетанной инфекционной патологии (ветряной оспы и геморрагической лихорадки с почечным синдромом) у пациента с распространенным псориазом / Н.В. Свистунова [и др.] // Журнал инфектологии. – 2019. – Т. 11, № 2. – С.133–137.

11. Ткаченко, Е.А. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (история, проблемы и перспективы изучения) / Е.А. Ткаченко, Т.К. Дзагурова, А.Д. Бернштейн // Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. – 2016. – № 15(3). – С. 23–34.

12. Zhang L. Analysis of improperly diagnosed cases of hemorrhagic fever with renal syndrome in children: two cases and a review of the literature / L. Zhang, Ma Q., Zhang Y. et al. // BMC Nephrol. 20, 383 (2019). https://doi.org/10.1186/s12882-019-1562-0

Меры профилактики геморрагической лихорадки с почечным синдромом

Меры профилактики геморрагической лихорадки с почечным синдромом
Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) - тяжелое вирусное инфекционное заболевание, проявляющееся поражением мелких кровеносных сосудов, почек, легких и других органов человека.
Возбудители заболевания размножаются в организме мышевидных грызунов и выделяются во внешнюю среду с их мочой и испражнениями. Главным носителем возбудителя ГЛПС в Курской области является рыжая полевка, которая обитает в лиственных лесах. Другие виды мышевидных грызунов также могут переносить вирус, однако это происходит реже. Осенью мышевидные грызуны мигрируют в дома и надворные постройки, дачные домики, заселяя которые они инфицируют своими выделениями предметы обихода, пищевые продукты и воду.
Человек заражается ГЛПС при посещении лесных массивов (туризм, охота, рыбная ловля, сбор ягод, грибов, растений), при уборке картофеля и корнеплодов, работах на садово-огородных участках, на сенокосах и пр.
Выделяют несколько путей заражения:
1.)    Воздушно-пылевой - при вдыхании пылевых частиц, загрязненных выделениями грызунов, образующихся при переносе сена, соломы, зерна, уборке помещений, подвалов и пр.;
2.)    Пищевой - при употреблении пищевых продуктов инфицированных выделениями мышевидных грызунов или при употреблении продуктов питания немытыми руками;
3.)    Контактный - при непосредственном контакте или укусах мышевидными грызунами.
От человека к человеку заболевание не передается.
С момента заражения до появления первых признаков заболевания обычно проходит 14-20 дней (реже до 45 дней).
В начале заболевания симптомы ГЛПС напоминают обычную «простуду» -  повышается температура тела, появляются головная боль, боли в мышцах, общая слабость, снижается аппетит. Позднее присоединяются боли в пояснице и животе; могут быть тошнота и рвота. Нарушение функции почек проявляется снижением количества выделяемой мочи. Возможно появление сыпи на коже, носовых кровотечений, крови в моче.
При ГЛПС могут возникать опасные для жизни осложнения, поэтому при появлении первых симптомов нельзя заниматься самолечением, следует немедленно обратиться за медицинской помощью.
В целях предотвращения заражения необходимо:
1.    При посещении леса и природных биотопов:
- избегайте остановок в участках леса с густой растительностью, поваленными деревьями;
-  при остановках на землю стелите непромокаемые пледы; продукты раскладывайте на столах на клеенке;
-не оставляйте пищевые продукты в открытом виде, доступном для грызунов; в случае их порчи грызунами такие продукты употреблять нельзя;
-при ночевке в палатке закрывайте все щели, через которые могут проникнуть грызуны;
-соблюдайте правила личной гигиены: перед приемом пищи обязательно мойте руки с мылом;
-не употребляйте в пищу немытые ягоды, плоды;
-не пейте из открытых неблагоустроенных источников; для питья и мытья посуды используйте бутилированную воду.
2.    На участках, в доме и надворных постройках:
- не захламляйте жильё и подсобные помещения, дворовые участки, своевременно вывозите бытовой мусор;
- пищевые продукты храните в недоступных для грызунов местах; не употребляйте в пищу подпорченные или загрязненные грызунами продукты;
- уборку в помещениях после длительного отсутствия проводите влажным способом в ватно-марлевой повязке и резиновых перчатках, по возможности с применением разрешенных дезинфицирующих средств; после уборки тщательно проветрите помещение;
- при сенокосах, перевозке и складировании сена, соломы надевайте 3-4-х слойную марлевую повязку и перчатки;
- во время работ нельзя принимать пищу, курить.
3.    Овощи и фрукты, собранные на приусадебном участке, а также приобретенные в магазинах и на рынках перед употреблением обязательно мойте кипяченой водой.
4.    Не прикасайтесь к живым или мёртвым грызунам без рукавиц или резиновых перчаток.
5.    Обеспечьте грызунонепроницаемость в загородных домах, сооружениях - заделайте вентиляционные отверстия металлической сеткой; зацементируйте щели и отверстия в полах и потолках.
6.    Весной и осенью обязательно проводите истребление грызунов. Для этого можно прибегать к услугам специализированной организации или самостоятельно приобретать средства отпугивания или уничтожения грызунов в организациях и магазинах.  Использовать средства отпугивания или уничтожения мышевидных грызунов нужно строго в соответствии с инструкцией по их применению.   
 

CDC - Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (HFRS)

Что такое геморрагическая лихорадка с почечным синдромом?

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) - это группа клинически сходных заболеваний, вызываемых хантавирусами из семейства Bunyaviridae. HFRS включает такие заболевания, как корейская геморрагическая лихорадка, эпидемическая геморрагическая лихорадка и эпидемическая нефропатия. К вирусам, вызывающим HFRS, относятся вирусы Хантаан, Добрава, Сааремаа, Сеул и Пуумала.

Где находится HFRS?

HFRS встречается по всему миру.Вирус Хаантан широко распространен в Восточной Азии, особенно в Китае, России и Корее. Вирус Пуумала обнаружен в Скандинавии, Западной Европе и Западной России. Вирус Добрава встречается в основном на Балканах, а вирус Сеула встречается во всем мире. Сааремаа находится в Центральной Европе и Скандинавии. В Америке хантавирусы вызывают другое заболевание, известное как хантавирусный легочный синдром.

Как люди заражаются HFRS?

Хантавирусы переносятся и передаются грызунами.Люди могут заразиться этими вирусами и развить HFRS после контакта с аэрозольной мочой, пометом или слюной инфицированных грызунов или после контакта с пылью из их гнезд. Передача может также произойти, когда инфицированная моча или другие материалы попадают непосредственно в поврежденную кожу или на слизистые оболочки глаз, носа или рта. Кроме того, люди, работающие с живыми грызунами, могут подвергаться воздействию хантавирусов через укусы грызунов инфицированных животных. Передача от одного человека к другому может происходить, но крайне редко.

Какие грызуны являются переносчиками хантавирусов, вызывающих HFRS у людей?

Грызуны - естественный резервуар для хантавирусов. Известные носители включают полосатую полевую мышь ( Apodemus agrarius ), резервуар для вирусов Сааремаа и Хантаан; коричневая или норвежская крыса ( Rattus norvegicus ), резервуар для сеульского вируса; рыжая полевка ( Clethrionomys glareolus ), резервуар вируса Пуумала; и желтошеей полевой мыши ( Apodemus flavicollis ), которая является переносчиком вируса Добрава.

Каковы симптомы ГЛПС?

Симптомы ГЛПС обычно развиваются в течение 1-2 недель после контакта с инфекционным материалом, но в редких случаях для их развития может потребоваться до 8 недель. Первоначальные симптомы начинаются внезапно и включают сильные головные боли, боли в спине и животе, лихорадку, озноб, тошноту и нечеткость зрения. У людей может быть покраснение лица, воспаление или покраснение глаз или сыпь. Более поздние симптомы могут включать низкое кровяное давление, острый шок, сосудистую утечку и острую почечную недостаточность, что может вызвать серьезную перегрузку жидкостью.Тяжесть заболевания зависит от вируса, вызывающего инфекцию. Вирусные инфекции Хантаан и Добрава обычно вызывают тяжелые симптомы, тогда как вирусные инфекции Сеула, Сааремаа и Пуумала обычно более умеренные. Полное выздоровление может занять недели или месяцы.

Как диагностируется ГЛПС?

Несколько лабораторных тестов используются для подтверждения диагноза HFRS у пациентов с клиническим анамнезом, совместимым с этим заболеванием. У таких пациентов определяется наличие ГЛПС, если у них есть положительные результаты серологического теста на хантавирусную инфекцию, наличие антигена хантавируса в ткани при иммуногистохимическом окрашивании и исследовании под микроскопом или наличие последовательностей РНК хантавируса в крови или ткани.

Как лечится ГЛПС?

Поддерживающая терапия - это основа лечения пациентов с хантавирусными инфекциями. Уход включает тщательный контроль уровня жидкости (гидратация) и электролитов (например, натрия, калия, хлорида) у пациента, поддержание правильного уровня кислорода и артериального давления и соответствующее лечение любых вторичных инфекций. Для устранения тяжелой перегрузки жидкостью может потребоваться диализ. Было показано, что внутривенный рибавирин, противовирусный препарат, снижает заболеваемость и смертность, связанные с HFRS, если его использовать на очень ранней стадии заболевания.

Является ли HFRS смертельным исходом?

В зависимости от вируса, вызывающего HFRS, смерть наступает от менее 1% до 15% пациентов. Летальность колеблется в пределах 5-15% от ГЛПС, вызванного вирусом Хантаан, и менее 1% от болезни, вызванной вирусом Пуумала.

Как предотвратить ГЛПС?

Борьба с грызунами - это основная стратегия предотвращения хантавирусных инфекций. Популяции грызунов вблизи человеческих сообществ следует контролировать, а грызунов не допускать в дома.Людям следует избегать контакта с мочой, пометом, слюной и материалами для гнезд грызунов, а при уборке территорий, зараженных грызунами, следует соблюдать описанные ниже меры безопасности.

Вспышка сеульского вируса в США и Канаде в 2017 г.

CDC помогал чиновникам здравоохранения расследовать вспышку вирусной инфекции Сеула, которая заразила 17 человек, и обнаружила 31 зараженную крысу в 11 штатах, включая Колорадо, Джорджия, Иллинойс, Айову, Миннесоту, Миссури, Пенсильванию, Южную Каролину, Теннесси, Юту и Висконсин.Исследования CDC и партнерских государственных и местных департаментов здравоохранения показали, что потенциально инфицированные грызуны могли быть распространены или получены в Колорадо, Делавэре, Джорджии, Иллинойсе, Айдахо, Айове, Миннесоте, Миссури, Нью-Джерси, Пенсильвании, Южной Каролине, Теннесси, Юте, и Висконсин.

Исследование включало тестирование на крысах и людях. В дополнение к тестированию, предоставленному CDC для крыс и людей, связанных с крысами с подтвержденными инфекциями, было также доступно коммерческое тестирование для крыс.При первоначальной оценке тестовые наборы, разработанные коммерческими лабораториями IDEXX и Charles River Laboratories *, дали результаты с той же точностью, что и тест CDC.

В рамках программы мониторинга здоровья владельцы и заводчики крыс могут захотеть проверить инфекционный статус крысы перед тем, как принять новых животных в существующие колонии.

Рекомендуемая литература

Хан А, Ксязек Т.Г., Петерс С.Дж. Вирусные геморрагические лихорадки. Семинары по детским инфекционным болезням 1997; 8 (Приложение 1): 64-73 .

Линдерхольм М., Элгх Ф. Клинические характеристики хантавирусных инфекций на евразийском континенте. Актуальные темы микробиологии и иммунологии . 2001; 256: 135-51.

Питерс CJ. Вирусные геморрагические лихорадки. Вирусный патогенез . Нью-Йорк: Lippincott-Raven Publishers, 1997, 779-94.

Питерс К.Дж., Симпсон Г.Л., Леви Х. Спектр хантавирусной инфекции: геморрагическая лихорадка с почечным синдромом и хантавирусный легочный синдром. Annual Review of Medicine 1999; 50: 531-45 .

Schmaljohn C, Hjelle B. Хантавирусы: глобальная проблема болезней. Новые инфекционные заболевания 1997; 3: 95-104 .

Медицинская помощь, хирургическая помощь, консультации

  • Macneil A, Nichol ST, Spiropoulou CF. Хантавирусный легочный синдром. Вирус Res . 2011 декабрь 162 (1-2): 138-47. [Медлайн].

  • López N, Padula P, Rossi C, Lázaro ME, Franze-Fernández MT. Генетическая идентификация нового хантавируса, вызывающего тяжелый легочный синдром в Аргентине. Вирусология . 1 июня 1996 г. 220 (1): 223-6. [Медлайн].

  • Ahlm C, Settergren B, Gothefors L, Juto P. Epidemica Nephropathia (геморрагическая лихорадка с почечным синдромом) у детей: клинические характеристики. Педиатр Инфекция Дис J . 1994 13 января (1): 45-9. [Медлайн].

  • Puca E, Pilaca A, Pipero P, Kraja D, Puca EY. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, ассоциированным с острым панкреатитом. Вирол Син . 2012 июн.27 (3): 214-7. [Медлайн].

  • Puca E, Pilaca A, Pipero P, Bino S, Kote M, Rogozi E. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, осложненным орхитом. Вирол Син . 2011 26 августа (4): 285-8. [Медлайн].

  • Outinen TK, Laine OK, Mäkelä S, Pörsti I, Huhtala H, Vaheri A, et al. Тромбоцитопения связана с тяжестью воспаления и переменными, отражающими капиллярную утечку при инфекции Puumala Hantavirus, анализ 546 финских пациентов. Инфекция Дис (Лондон) . 2016 Сентябрь 48 (9): 682-7. [Медлайн].

  • Отинен Т.К., Мантула П., Лайне ОК, Пёрсти I, Вахери А., Мякеля С.М. и др. Гематурия является маркером тяжести острого повреждения почек, но не связана с тромбоцитопенией при острой хантавирусной инфекции Пуумала. Инфекция Дис (Лондон) . 2017 ноябрь - декабрь 49 (11-12): 840-846. [Медлайн].

  • Бруно П., Хасселл Л.Х., Браун Дж. И др. Разнообразные проявления геморрагической лихорадки с почечным синдромом.Ретроспективный обзор 26 случаев из Кореи. Энн Интерн Мед. 1990, сентябрь 1. 113 (5): 385-91. [Медлайн].

  • Mantula PS, Outinen TK, Clement JPG, Huhtala HSA, Pörsti IH, Vaheri A, et al. Гломерулярная протеинурия предсказывает тяжесть острой почечной недостаточности при тубулоинтерстициальном нефрите, индуцированном хантавирусом Пуумала. Нефрон . 2017. 136 (3): 193-201. [Медлайн].

  • Huggins JW, Hsiang CM, Cosgriff TM, et al. Проспективное двойное слепое параллельное плацебо-контролируемое клиническое исследование внутривенной терапии геморрагической лихорадки с почечным синдромом рибавирином. Дж. Заражение Дис. . 1991 Декабрь 164 (6): 1119-27. [Медлайн].

  • Йонссон CB, Хупер Дж., Мертц Г. Лечение хантавирусного легочного синдрома. Противовирусное лечение . 2008 апр. 78 (1): 162-9. [Медлайн]. [Полный текст].

  • Чапман Л.Е., Мертц Г.Дж., Петерс С.Дж. и др. Внутривенное введение рибавирина при хантавирусном легочном синдроме: безопасность и переносимость в течение 1 года открытого опыта. Группа изучения рибавирина. Антивир Тер . 1999 г.4 (4): 211-9. [Медлайн].

  • Йованович Д., Ковачевич З., Драгович Т., Петрович М., Тадич Дж. [Атрофия передней доли гипофиза как позднее осложнение геморрагической лихорадки с почечным синдромом]. Войносанит Прегл . 2009 Февраль 66 (2): 166-8. [Медлайн].

  • Аль-Хазми М., Айула Э.А., Абдурахман М. и др. Эпидемия лихорадки Рифт-Валли в Саудовской Аравии: клиническое исследование тяжелого заболевания у людей. Клин Инфекция Дис . 2003 г., 1 февраля, 36 (3): 245-52.[Медлайн].

  • Bahk YW, Kim CY. Рентгенологические проявления эпидемической геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Br J Радиол . 1978, ноябрь 51 (611): 847-50. [Медлайн].

  • Boonpucknavig V, Soontornniyomkij V. Патология почечных заболеваний в тропиках. Семин Нефрол . 2003 января, 23 (1): 88-106. [Медлайн].

  • Bui-Mansfield LT, Cressler DK. Визуализация геморрагической лихорадки с почечным синдромом: потенциальный агент биотерроризма военного значения. Мил Мед . 2011 ноябрь 176 (11): 1327-34. [Медлайн].

  • Clement J, Vercauteren J, Verstraeten WW, Ducoffre G, Barrios JM, Vandamme AM. Связь увеличения заболеваемости хантавирусом с изменением климата: связь мачты. Инт Дж. Здоровье Geogr . 2009. 8: 1. [Медлайн].

  • Дойл Т.Дж., Брайан Р.Т., Питерс С.Дж. Вирусные геморрагические лихорадки и хантавирусные инфекции в Америке. Инфекция Dis Clin North Am . 1998 Март.12 (1): 95-110. [Медлайн].

  • Eboriadou M, Kalevrosoglou I, Varlamis G, et al. Хантавирусная нефропатия у ребенка. Циферблат нефрола для трансплантации . 1999 г., 14 (4): 1040-1. [Медлайн].

  • Elisaf M, Korakis H, Siamopoulos KC. Хроническая дисфункция почек у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом. Неисправность Рен . 1993. 15 (5): 623-7. [Медлайн].

  • Elisaf M, Сиамопулос, KC. Поражение легких у пациентов с ГЛПС. Сундук . 1995 февраль 107 (2): 588-9. [Медлайн].

  • Elisaf MS, Siamopoulos KC. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, индуцированная хроническим нарушением функции почек. Ам Дж. Нефрол . 1999. 19 (6): 709. [Медлайн].

  • Glass GE, Watson AJ, LeDuc JW и др. Заражение хантавирусом, передающимся через крыс, у жителей США неизменно связано с гипертонической болезнью почек. Дж. Заражение Дис. . 1993 Март 167 (3): 614-20. [Медлайн].

  • Головлева И., Василенко В., Митценков В. и др.Характеристика геморрагической лихорадки с почечным синдромом, вызванной хантавирусами, Эстония. Emerg Infect Dis . 2007 13 ноября (11): 1773-6. [Медлайн].

  • Hukic M, Valjevac A, Tulumovic D, Numanovic F, Heyman P. Патогенность и вирулентность существующих хантавирусов в Боснии и Герцеговине: влияние на функцию почек. Eur J Clin Microbiol Infect Dis . 2011 30 марта (3): 381-5. [Медлайн].

  • Ким Ю.К., Ли СК, Ким Си, Хео СТ, Чой Си, Ким Дж.Клинические и лабораторные предикторы олигурической почечной недостаточности при геморрагической лихорадке с почечным синдромом, вызванным вирусом Хантаан. J Заразить . 2007 апр. 54 (4): 381-6. [Медлайн].

  • Клемпа Б, Ткаченко Е.А., Дзагурова Т.К., Юничева Ю.В., Морозов В.Г., Окулова Н.М. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, вызванная двумя линиями Dobrava hantavirus, Россия. Emerg Infect Dis . 2008 г., 14 (4): 617-25. [Медлайн].

  • Ко кВт. Клиническая викторина.Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (HFRS, корейская геморрагическая лихорадка). Педиатр Нефрол . 1995 Октябрь 9 (5): 537-8. [Медлайн].

  • Ко кВт. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: клинические аспекты. Педиатр Нефрол . 1992 6 (2) марта: 197-200. [Медлайн].

  • Кузман И. Клиническая картина геморрагической лихорадки с почечным синдромом в Хорватии. Акта Мед Хорватия . 2003. 57 (5): 393-7. [Медлайн].

  • Лаутала П., Угари М.Эпидемическая нефропатия у детей. Ам Дж. Дис Детский . 1991 Октябрь 145 (10): 1181-3. [Медлайн].

  • Linderholm M, Billström A, Settergren B, Tärnvik A. Поражение легких при эпидемической нефропатии, как показано с помощью компьютерной томографии. Инфекция . 1992 сентябрь-октябрь. 20 (5): 263-6. [Медлайн].

  • Magill AJ. Лихорадка у вернувшегося путешественника. Инфекция Dis Clin North Am . 1998 Июнь 12 (2): 445-69. [Медлайн].

  • Makela S, Ala-Houhala I, Mustonen J, et al.Функция почек и артериальное давление через пять лет после нефропатии, вызванной вирусом пуумала. Почек Инт . 2000 Октябрь 58 (4): 1711-8. [Медлайн].

  • Мустонен Дж., Вахери А., Клемент Дж. Третья международная конференция по геморрагической лихорадке с почечным синдромом (HFRS) и хантавирусам. Циферблат нефрола для трансплантации . 1996 г., 11 (4): 730-3. [Медлайн].

  • Немиров К., Вапалахти О., Лундквист А., Василенко В., Головлева И., Плюснина А. Выделение и характеристика хантавируса Добрава, переносимого полосатой полевой мышью (Apodemus agrarius) в Эстонии. Дж. Ген Вирол . 1999, февраль 80 (часть 2): 371-9. [Медлайн].

  • Никлассон BS. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, вирусологические и эпидемиологические аспекты. Педиатр Нефрол . 1992 марта 6 (2): 201-4. [Медлайн].

  • Папа А., Бино С., Пападимитриу Э, Вело Э, Димолеа М., Антониадис А. Подозреваемые случаи геморрагической лихорадки Крымского Конго в Албании. Сканд Дж. Инфекция Дис . 2008. 40 (11-12): 978-80. [Медлайн].

  • Пападимитриу М.Хантавирусная нефропатия. Почек Инт . 1995 Сентябрь 48 (3): 887-902. [Медлайн].

  • Пападимитриу М.Г., Антониадис А. Хантавирусная нефропатия в Греции. Ланцет . 1994, 23 апреля. 343 (8904): 1038. [Медлайн].

  • Peco-Antic A, Popovic-Rolovic M, Gligic A, et al. Клиническая характеристика геморрагической лихорадки с почечным синдромом у детей. Педиатр Нефрол . 1992 июл.6 (4): 335-8. [Медлайн].

  • Питерс С.Дж., Симпсон Г.Л., Леви Х.Спектр хантавирусной инфекции: геморрагическая лихорадка с почечным синдромом и хантавирусный легочный синдром. Анну Рев Мед . 1999. 50: 531-45. [Медлайн].

  • Rasche FM, Uhel B, Kruger DH, et al. Тромбоцитопения и острая почечная недостаточность при инфекциях хантавируса Пуумала. Emerg Infect Dis . 2004 10 августа (8): 1420-5. [Медлайн].

  • Wichmann D, Slenczka W, Alter P, Boehm S, Feldmann H. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: диагностические проблемы с известным заболеванием. Дж. Клин Микробиол . 2001 сентябрь 39 (9): 3414-6. [Медлайн].

  • Yoo KH, Choi Y. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом у корейских детей. Корейское общество детской нефрологии. Педиатр Нефрол . 1994 8 октября (5): 540-4. [Медлайн].

  • Zeier M, Handermann M, Bahr U, et al. Новые экологические аспекты хантавирусной инфекции: смена парадигмы и проблема профилактики - обзор. Гены вирусов . 2005 Март.30 (2): 157-80. [Медлайн].

  • Геморрагическая лихорадка с синдромом почечной недостаточности: история вопроса, патофизиология, эпидемиология

  • Macneil A, Nichol ST, Spiropoulou CF. Хантавирусный легочный синдром. Вирус Res . 2011 декабрь 162 (1-2): 138-47. [Медлайн].

  • López N, Padula P, Rossi C, Lázaro ME, Franze-Fernández MT. Генетическая идентификация нового хантавируса, вызывающего тяжелый легочный синдром в Аргентине. Вирусология .1 июня 1996 г. 220 (1): 223-6. [Медлайн].

  • Ahlm C, Settergren B, Gothefors L, Juto P. Epidemica Nephropathia (геморрагическая лихорадка с почечным синдромом) у детей: клинические характеристики. Педиатр Инфекция Дис J . 1994 13 января (1): 45-9. [Медлайн].

  • Puca E, Pilaca A, Pipero P, Kraja D, Puca EY. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, ассоциированным с острым панкреатитом. Вирол Син . 2012 июн. 27 (3): 214-7. [Медлайн].

  • Puca E, Pilaca A, Pipero P, Bino S, Kote M, Rogozi E. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, осложненным орхитом. Вирол Син . 2011 26 августа (4): 285-8. [Медлайн].

  • Outinen TK, Laine OK, Mäkelä S, Pörsti I, Huhtala H, Vaheri A, et al. Тромбоцитопения связана с тяжестью воспаления и переменными, отражающими капиллярную утечку при инфекции Puumala Hantavirus, анализ 546 финских пациентов. Инфекция Дис (Лондон) .2016 Сентябрь 48 (9): 682-7. [Медлайн].

  • Отинен Т.К., Мантула П., Лайне ОК, Пёрсти I, Вахери А., Мякеля С.М. и др. Гематурия является маркером тяжести острого повреждения почек, но не связана с тромбоцитопенией при острой хантавирусной инфекции Пуумала. Инфекция Дис (Лондон) . 2017 ноябрь - декабрь 49 (11-12): 840-846. [Медлайн].

  • Бруно П., Хасселл Л.Х., Браун Дж. И др. Разнообразные проявления геморрагической лихорадки с почечным синдромом.Ретроспективный обзор 26 случаев из Кореи. Энн Интерн Мед. 1990, сентябрь 1. 113 (5): 385-91. [Медлайн].

  • Mantula PS, Outinen TK, Clement JPG, Huhtala HSA, Pörsti IH, Vaheri A, et al. Гломерулярная протеинурия предсказывает тяжесть острой почечной недостаточности при тубулоинтерстициальном нефрите, индуцированном хантавирусом Пуумала. Нефрон . 2017. 136 (3): 193-201. [Медлайн].

  • Huggins JW, Hsiang CM, Cosgriff TM, et al. Проспективное двойное слепое параллельное плацебо-контролируемое клиническое исследование внутривенной терапии геморрагической лихорадки с почечным синдромом рибавирином. Дж. Заражение Дис. . 1991 Декабрь 164 (6): 1119-27. [Медлайн].

  • Йонссон CB, Хупер Дж., Мертц Г. Лечение хантавирусного легочного синдрома. Противовирусное лечение . 2008 апр. 78 (1): 162-9. [Медлайн]. [Полный текст].

  • Чапман Л.Е., Мертц Г.Дж., Петерс С.Дж. и др. Внутривенное введение рибавирина при хантавирусном легочном синдроме: безопасность и переносимость в течение 1 года открытого опыта. Группа изучения рибавирина. Антивир Тер . 1999 г.4 (4): 211-9. [Медлайн].

  • Йованович Д., Ковачевич З., Драгович Т., Петрович М., Тадич Дж. [Атрофия передней доли гипофиза как позднее осложнение геморрагической лихорадки с почечным синдромом]. Войносанит Прегл . 2009 Февраль 66 (2): 166-8. [Медлайн].

  • Аль-Хазми М., Айула Э.А., Абдурахман М. и др. Эпидемия лихорадки Рифт-Валли в Саудовской Аравии: клиническое исследование тяжелого заболевания у людей. Клин Инфекция Дис . 2003 г., 1 февраля, 36 (3): 245-52.[Медлайн].

  • Bahk YW, Kim CY. Рентгенологические проявления эпидемической геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Br J Радиол . 1978, ноябрь 51 (611): 847-50. [Медлайн].

  • Boonpucknavig V, Soontornniyomkij V. Патология почечных заболеваний в тропиках. Семин Нефрол . 2003 января, 23 (1): 88-106. [Медлайн].

  • Bui-Mansfield LT, Cressler DK. Визуализация геморрагической лихорадки с почечным синдромом: потенциальный агент биотерроризма военного значения. Мил Мед . 2011 ноябрь 176 (11): 1327-34. [Медлайн].

  • Clement J, Vercauteren J, Verstraeten WW, Ducoffre G, Barrios JM, Vandamme AM. Связь увеличения заболеваемости хантавирусом с изменением климата: связь мачты. Инт Дж. Здоровье Geogr . 2009. 8: 1. [Медлайн].

  • Дойл Т.Дж., Брайан Р.Т., Питерс С.Дж. Вирусные геморрагические лихорадки и хантавирусные инфекции в Америке. Инфекция Dis Clin North Am . 1998 Март.12 (1): 95-110. [Медлайн].

  • Eboriadou M, Kalevrosoglou I, Varlamis G, et al. Хантавирусная нефропатия у ребенка. Циферблат нефрола для трансплантации . 1999 г., 14 (4): 1040-1. [Медлайн].

  • Elisaf M, Korakis H, Siamopoulos KC. Хроническая дисфункция почек у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом. Неисправность Рен . 1993. 15 (5): 623-7. [Медлайн].

  • Elisaf M, Сиамопулос, KC. Поражение легких у пациентов с ГЛПС. Сундук . 1995 февраль 107 (2): 588-9. [Медлайн].

  • Elisaf MS, Siamopoulos KC. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, индуцированная хроническим нарушением функции почек. Ам Дж. Нефрол . 1999. 19 (6): 709. [Медлайн].

  • Glass GE, Watson AJ, LeDuc JW и др. Заражение хантавирусом, передающимся через крыс, у жителей США неизменно связано с гипертонической болезнью почек. Дж. Заражение Дис. . 1993 Март 167 (3): 614-20. [Медлайн].

  • Головлева И., Василенко В., Митценков В. и др.Характеристика геморрагической лихорадки с почечным синдромом, вызванной хантавирусами, Эстония. Emerg Infect Dis . 2007 13 ноября (11): 1773-6. [Медлайн].

  • Hukic M, Valjevac A, Tulumovic D, Numanovic F, Heyman P. Патогенность и вирулентность существующих хантавирусов в Боснии и Герцеговине: влияние на функцию почек. Eur J Clin Microbiol Infect Dis . 2011 30 марта (3): 381-5. [Медлайн].

  • Ким Ю.К., Ли СК, Ким Си, Хео СТ, Чой Си, Ким Дж.Клинические и лабораторные предикторы олигурической почечной недостаточности при геморрагической лихорадке с почечным синдромом, вызванным вирусом Хантаан. J Заразить . 2007 апр. 54 (4): 381-6. [Медлайн].

  • Клемпа Б, Ткаченко Е.А., Дзагурова Т.К., Юничева Ю.В., Морозов В.Г., Окулова Н.М. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, вызванная двумя линиями Dobrava hantavirus, Россия. Emerg Infect Dis . 2008 г., 14 (4): 617-25. [Медлайн].

  • Ко кВт. Клиническая викторина.Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (HFRS, корейская геморрагическая лихорадка). Педиатр Нефрол . 1995 Октябрь 9 (5): 537-8. [Медлайн].

  • Ко кВт. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: клинические аспекты. Педиатр Нефрол . 1992 6 (2) марта: 197-200. [Медлайн].

  • Кузман И. Клиническая картина геморрагической лихорадки с почечным синдромом в Хорватии. Акта Мед Хорватия . 2003. 57 (5): 393-7. [Медлайн].

  • Лаутала П., Угари М.Эпидемическая нефропатия у детей. Ам Дж. Дис Детский . 1991 Октябрь 145 (10): 1181-3. [Медлайн].

  • Linderholm M, Billström A, Settergren B, Tärnvik A. Поражение легких при эпидемической нефропатии, как показано с помощью компьютерной томографии. Инфекция . 1992 сентябрь-октябрь. 20 (5): 263-6. [Медлайн].

  • Magill AJ. Лихорадка у вернувшегося путешественника. Инфекция Dis Clin North Am . 1998 Июнь 12 (2): 445-69. [Медлайн].

  • Makela S, Ala-Houhala I, Mustonen J, et al.Функция почек и артериальное давление через пять лет после нефропатии, вызванной вирусом пуумала. Почек Инт . 2000 Октябрь 58 (4): 1711-8. [Медлайн].

  • Мустонен Дж., Вахери А., Клемент Дж. Третья международная конференция по геморрагической лихорадке с почечным синдромом (HFRS) и хантавирусам. Циферблат нефрола для трансплантации . 1996 г., 11 (4): 730-3. [Медлайн].

  • Немиров К., Вапалахти О., Лундквист А., Василенко В., Головлева И., Плюснина А. Выделение и характеристика хантавируса Добрава, переносимого полосатой полевой мышью (Apodemus agrarius) в Эстонии. Дж. Ген Вирол . 1999, февраль 80 (часть 2): 371-9. [Медлайн].

  • Никлассон BS. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, вирусологические и эпидемиологические аспекты. Педиатр Нефрол . 1992 марта 6 (2): 201-4. [Медлайн].

  • Папа А., Бино С., Пападимитриу Э, Вело Э, Димолеа М., Антониадис А. Подозреваемые случаи геморрагической лихорадки Крымского Конго в Албании. Сканд Дж. Инфекция Дис . 2008. 40 (11-12): 978-80. [Медлайн].

  • Пападимитриу М.Хантавирусная нефропатия. Почек Инт . 1995 Сентябрь 48 (3): 887-902. [Медлайн].

  • Пападимитриу М.Г., Антониадис А. Хантавирусная нефропатия в Греции. Ланцет . 1994, 23 апреля. 343 (8904): 1038. [Медлайн].

  • Peco-Antic A, Popovic-Rolovic M, Gligic A, et al. Клиническая характеристика геморрагической лихорадки с почечным синдромом у детей. Педиатр Нефрол . 1992 июл.6 (4): 335-8. [Медлайн].

  • Питерс С.Дж., Симпсон Г.Л., Леви Х.Спектр хантавирусной инфекции: геморрагическая лихорадка с почечным синдромом и хантавирусный легочный синдром. Анну Рев Мед . 1999. 50: 531-45. [Медлайн].

  • Rasche FM, Uhel B, Kruger DH, et al. Тромбоцитопения и острая почечная недостаточность при инфекциях хантавируса Пуумала. Emerg Infect Dis . 2004 10 августа (8): 1420-5. [Медлайн].

  • Wichmann D, Slenczka W, Alter P, Boehm S, Feldmann H. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом: диагностические проблемы с известным заболеванием. Дж. Клин Микробиол . 2001 сентябрь 39 (9): 3414-6. [Медлайн].

  • Yoo KH, Choi Y. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом у корейских детей. Корейское общество детской нефрологии. Педиатр Нефрол . 1994 8 октября (5): 540-4. [Медлайн].

  • Zeier M, Handermann M, Bahr U, et al. Новые экологические аспекты хантавирусной инфекции: смена парадигмы и проблема профилактики - обзор. Гены вирусов . 2005 Март.30 (2): 157-80. [Медлайн].

  • Анализ неправильно диагностированных случаев геморрагической лихорадки с почечным синдромом у детей: два случая и обзор литературы | BMC Nephrology

    HFRS - это острое заболевание, вызываемое хантавирусом семейства Bunyaviridae. Это разновидность зооноза. Заражение человека разными вирусами имеет разную клиническую степень тяжести. Наиболее часто встречающимся видом в Западной Европе является вирус Пуумала [6], который обычно вызывает более легкую форму ГЛПС. Тем более заражение среди детей намного легче, чем среди взрослых [7].В то время как в Азии, в основном в Китае, распространенными видами являются вирус Хантаан (HTNV) и вирус Сеула (SEOV) [8, 9], которые часто вызывают более тяжелую форму HFRS. Примечательно, что был обнаружен новый европейский хантавирус - сочинский вирус, вызывающий тяжелое течение хантавирусной болезни с высокой смертностью [10]. Помимо HFRS, хантавирус может вызывать хантавирусный сердечно-легочный синдром (HCPS) или хантавирусный легочный синдром (HPS).

    Заражение человека происходит главным образом через вирусосодержащие выделения грызунов в аэрозольной форме, такие как моча, фекалии или слюна [11].Это более распространено среди сельских жителей, где распространены заражения грызунами. Грызуны выступают в качестве естественных носителей хантавируса и могут передавать болезнь путем прямого заражения через укусы. Жертвы также могут заразиться через контакт с пометом грызунов, зараженным вирусом [12]. Хотя оба наших пациента отрицали укусы мышей, они могли контактировать с зараженными пометами без предварительного уведомления. Кроме того, у отца нашего первого пациента год назад была аналогичная клиническая картина, что подтверждает предположение о том, что они оба могли подвергнуться воздействию хантавируса в одной и той же среде.

    Комбинации болезней, вызываемых HFRS, включают лихорадку, различные геморрагические проявления и преходящие нарушения функции печени / почек [13]. Обычно он прогрессирует в пяти различных фазах, включая лихорадку, гипотензию, олигурию, диурез и выздоровление [14]. Наличие повреждений эндотелия, о чем свидетельствует расширение капилляров и их утечка, считается признаком хантавирусной инфекции [15]. Хотя точные патомеханизмы неясны, клиническая загадка продукции заметных цитокинов, активации калликреин-кининов и комплементов и повышенных уровней циркулирующих иммунных комплексов предполагает ключевую роль иммунных ответов на инфекцию.

    Хотя хантавирусная инфекция является глобальной проблемой здравоохранения [16], около 90% зарегистрированных случаев происходят из Китая [17]. Несмотря на то, что детские инфекции не были обычным явлением среди зарегистрированных случаев, это явление могло быть связано с недостаточным диагнозом, поскольку клинические проявления ГЛПС у детей могут быть нетипичными [12]. Между тем, сообщается, что клиническое впечатление от ГЛПС у детей легче, чем у взрослых [7]. В своем обзоре они сделали вывод о трех аспектах различия. Во-первых, в аспекте клинических симптомов у взрослых обычно наблюдались артралгия, мышечные боли и нарушения зрения, в то время как боль в животе и рвота чаще встречались у детей, чем у взрослых.Во-вторых, с точки зрения физических признаков преходящая гипертензия чаще встречалась у детей. В-третьих, в лабораторных исследованиях почти у всех взрослых был значительный лейкоцитоз, тогда как у детей наиболее частым лабораторным признаком была тромбоцитопения. Однако недавний анализ показал иное мнение [18]. Несмотря на некоторые определенные различия в симптомах, острое повреждение почек (ОПП) и тромбоцитопения возникали с одинаковой частотой и тяжестью как у детей, так и у взрослых. В другом исследовании утверждалось, что наличие тромбоцитопении очень чувствительно и специфично для выявления пациентов с хантавирусной инфекцией [19].Количество тромбоцитов также было предиктором и маркером тяжести и прогрессирования заболевания [20, 21].

    В детстве хантавирусная инфекция не является распространенной этиологией острого повреждения почек. Диагноз ГЛПС ставится на основании клинических проявлений, эпидемиологических данных и лабораторных исследований. Однако в случаях с легкими или атипичными клиническими симптомами трудно поставить диагноз только на основании клинических симптомов или признаков. В этих ситуациях большое значение имеют лабораторные исследования. Наиболее распространенными серологическими тестами являются непрямой ELISA на IgM и IgG, а также ELISA с захватом IgM [22, 23].Кроме того, хантавирусную инфекцию можно подтвердить обнаружением генома хантавируса в образцах крови или сыворотки с помощью ОТ-ПЦР. С экономической точки зрения, в нашем центре мы внедрили метод иммуноферментного анализа с захватом IgM. Оба пациента были подтверждены положительным результатом на антитела IgM к вирусу Хантаан. Тем не менее, получение результатов серологических тестов, подтверждающих предположительный диагноз, часто занимает много времени. Когда мы пересмотрели курс диагностики и лечения, мы устали выяснять, какие симптомы привели к предполагаемому диагнозу.У пациентки 1, помимо лихорадки, у нее были выявлены острые повреждения печени и почек, связанные с тромбоцитопенией и низким уровнем C 3 , но у нее не было никаких клинических признаков кровотечения, и ее физические признаки не выявляли гипертонии. Кроме того, и лихорадка, и тромбоцитопения могли возникнуть как при заболевании крови, так и при аутоиммунном заболевании, из-за чего мы почти сделали ей пункцию костного мозга и биопсию почки. Также она не представлена ​​в типичных пяти различных фазах. Следовательно, ее хантавирусная инфекция не была установлена ​​до тех пор, пока позже не были подтверждены серологические результаты.Задержка с серологическими тестами вызвала дилемму при первичном обследовании и лечении. Точно так же у пациентки 2 лихорадка с сильной головной болью также затрудняла диагностику HFRS во время ее первоначального клинического курса. Хотя у пациента 1 наблюдались тошнота и рвота, а у пациента 2 - боль в животе, эти симптомы не были специфичными. Кроме того, у детей часто возникают гибридные инфекции, такие как инфекция MP у обоих пациентов, что тоже может сбить нас с толку. Судя по предыдущей литературе и представленным нами случаям, лихорадка, сопровождающая тромбоцитопению у обоих пациентов, может привести к подозрению на диагноз ГЛПС.Это напомнило нам о необходимости учитывать ГЛПС и отличать их от других заболеваний.

    Временное снижение уровня C 3 у пациента 1 может свидетельствовать о том, что иммунные механизмы играют важную роль в патогенезе HFRS. Вскоре их количество тромбоцитов восстановилось, что показало, что у них также было более легкое течение болезни. У пациента 2 была спленомегалия, анемия и гетероморфные лимфоциты, вероятно, из-за воспаления в селезенке. О воспалении селезенки сообщалось при хантавирусных инфекциях у хозяев [24].Однако это не удалось идентифицировать, так как ни пункции костного мозга, ни каких-либо дополнительных исследований мы не проводили. Ограничением было то, что мы не проводили им почечную биопсию, поэтому мы не могли распознать почечную патологию HFRS. Поскольку они полностью выздоровели, это было выгодно для пациентов, не подвергавшихся инвазивному обследованию.

    В случае хантавирусной инфекции специального лечения не существует. Как правило, первичное лечение хантавирусной инфекции в основном является поддерживающим. В большинстве случаев функция почек полностью восстанавливается в течение нескольких дней.Иногда требуется гемодиализ, кислородная терапия и шоковая терапия. Однако когда дело доходит до смертельных хантавирусных инфекций, существует растущая потребность в разработке специальной терапии. В соответствии с известным патогенезом препараты, которые, как известно, влияют на повышенную проницаемость капилляров, такие как киназы, ангиопоэтин 1 и сфингозин 1 фосфат, проходят клинические испытания [25]. К счастью, оба наших пациента перенесли легкие проявления и полностью выздоровели без каких-либо остаточных повреждений после поддерживающего лечения.Что нужно объяснить, так это то, что наш пациент 2 принимал противовирусный препарат (рибавирин) в инфекционном отделении. Разногласия возникли по поводу того, следует ли использовать рибавирин для лечения HFRS. В предыдущем исследовании, в котором для наблюдения за эффектом внутривенной рибавириновой терапии HFRS в Китае использовался проспективный двойной слепой параллельный плацебо-контролируемый метод, сообщалось, что как заболеваемость, так и смертность значительно снизились [26]. Однако недавнее исследование лечения ГЛПС в России показало, что внутривенное введение рибавирина не влияет на кинетику вирусной нагрузки [27].Принимая во внимание побочный эффект от использования рибавирина у детей, мы не рекомендуем лечить детей рибавирином от HFRS. Лучшая защита - это предотвратить серьезное заражение. Поскольку в настоящее время нет одобренных FDA вакцин или средств лечения этих хантавирусных заболеваний [28], разработка вакцин для постконтактной профилактики является неотложной.

    Наши пациенты демонстрируют, как ГЛПС у детей является клинической картиной с множественными проявлениями, и высокий индекс подозрений имеет жизненно важное значение для постановки правильного диагноза.При возникновении неожиданной лихорадки, сопровождающейся тромбоцитопенией, педиатры должны принимать во внимание HFRS. Для постановки диагноза необходимо вовремя принять серологический тест. Раннее признание могло бы избежать ненужных инвазивных обследований и задержки лечения.

    Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом - обзор

    Хантавирусные вакцины

    HFRS, широко распространенный буньявирусный зооноз, переносимый грызунами в Азии, представляет собой пантропическую инфекцию с выраженными капиллярными кровоизлияниями, интерстициальным нефритом и летальностью от 3 до 10%. соотношение, которое до последнего десятилетия вызывало более 1000 случаев ежегодно в Республике Корея и более 100000 случаев в Китае. 18 Хотя это заболевание было хорошо известно в некоторых частях России и Азии как спорадическое, а иногда и эпидемическое заболевание среди фермеров, солдат и других лиц, живущих в кемпингах и лесах, на Западе оно было в значительной степени неизвестным до тысяч случаев военных случаев и смертельные случаи произошли во время Корейской войны, когда болезнь была описана как корейская геморрагическая лихорадка. Этиологический агент ускользнул от исследователей до 1976 года, когда новый буньявирус, вирус HTN, был выделен от полосатой полевой мыши Apodemus agrarius , которая оказалась основным резервуаром вируса в большинстве районов Азии.Позже антигенно связанный вирус SEO был выделен из Rattus rattus и Rattus norvegicus , что объяснило возникновение спорадических случаев и вспышек HFRS в городских районах. Впоследствии Sin Nombre и родственные ему хантавирусы были обнаружены в Западном полушарии, где редкие встречи с инфицированными грызунами приводят к небольшому количеству случаев с выраженным поражением легких. Сейчас во всем мире описано множество хантавирусов.

    Широкое распространение HFRS в Китае привело к тому, что органы общественного здравоохранения в 1980-х и 1990-х годах объявили это заболевание второй после гепатита B угрозой для здоровья населения, и, начиная с 1991 года, несколько китайских производителей вакцин использовали SMB, первичные клетки почек песчанок. (GKCs) или клетки PHK для получения инактивированных моновалентных вакцин против вирусов HTN или SEO.Вакцина GKC была инактивирована β-пропиолактоном, а две другие - формалином. Впоследствии были разработаны вакцины на основе клеточной линии Vero. Эти вакцины были оценены в девяти гиперэндемичных провинциях Китая на ГЛПС в период с 1994 по 2000 гг.

    Полученная из GKC вакцина против вируса HTN вызвала сероконверсии предположительно защитных титров нейтрализующих антител у 70,0% субъектов после трех первичных доз 0, 7 и 28 дней, доля возрастает до 91,2% после ревакцинации через 1 год и снижается до 59.0% через 2 года и 38,9% через 3 года. 1 Сходные результаты иммуногенности были получены для вакцины на основе PHK и очищенной вакцины SMB. 19

    В рандомизированном контролируемом испытании вакцины GKC с тремя группами, в котором вакцинированные субъекты получали три первичные дозы и ревакцинацию через 1 год, было зарегистрировано 18 случаев HFRS среди 7866 пациентов по возрасту, полу и месту жительства. подобранный контроль и 23 случая у 10 196 невакцинированных субъектов аналогичного возраста (от 16 до 60 лет), по сравнению с отсутствием у 7866 вакцинированных в течение 76 месяцев наблюдения, для защитной эффективности 100% (95% нижний предел достоверности 81 .94%, P = 0,00003, кумулятивная биномиальная вероятность). 20 Эффективность только трех первичных доз была продемонстрирована в течение года между введением трех серий первичных доз и бустерной дозы: с нулевым количеством случаев в вакцинированных и девятью и 10 случаями в невакцинированной и контрольной группах соответственно. Из 41 случая в контрольной и невакцинированной группах 24 были вызваны вирусом HTN, 13 - вирусом SEO и четыре - вирусом неопределенного серотипа. Таким образом, вакцина от моновалентного вируса HTN, полученного из GKC, обеспечивала защиту не только от гомологичного вируса, но также и перекрестную защиту от вируса SEO.Во время испытания не сообщалось о серьезных побочных эффектах, связанных с вакциной, а легкие местные и систематические реакции были зарегистрированы у 3,78% вакцинированных.

    Эффективность вакцины PHK и очищенной вакцины SMB была схожей: в нерандомизированных испытаниях один случай HFRS был обнаружен у 40 757 реципиентов вакцины PHK по сравнению с 53 у 47 313 невакцинированных субъектов, снижение на 97,81%; для очищенной вакцины SMB этот показатель составил 3,71 на 100 000 (1/26 942) по сравнению с 97,98 на 100 000 (34/34 699) для вакцинированных и невакцинированных субъектов, соответственно, снижение на 88.45%. Наблюдаемое снижение сохранялось в течение 6 лет наблюдения. Нетяжелые реакции были обнаружены у 1,57% реципиентов вакцины PHK и у 3,26% реципиентов вакцины SMB. 21,22

    Бивалентные вакцины против HTN и SEO, полученные из GKC и PHK, были разработаны и улучшены с помощью процедур очистки с помощью ультрацентрифугирования в градиенте плотности или хроматографии, чтобы они были более иммуногенными и менее реактогенными. Очищенная двухвалентная вакцина GKC индуцировала сероконверсию нейтрализующих антител против вируса HTN и вирусов SEO в 95.4% (83/87) и 93,1% (81/87) добровольцев, соответственно, после двух доз с интервалом в 14 дней и 96,3% (78/81) и 95,1% (77/81), соответственно, после бустерная доза через 6 месяцев. Наблюдались только легкие реакции; местные реакции у 1,72% (14/812) и системные реакции у 2,83% (23/812) вакцинированных. 23 Очищенная двухвалентная вакцина PHK индуцировала сероконверсию нейтрализующих антител против вируса HTN и вируса SEO у 87,4% (90/103) и 89,3% (92/103) субъектов, соответственно, после двух доз, разделенных 14 и 93 днями.3% (84/90) и 92,2% (83/90), соответственно, после ревакцинации через 6 месяцев. Системной реакции не было обнаружено у 396 вакцинированных, а легкие местные реакции наблюдались у двух (0,5%). 24

    Очищенная бивалентная вакцина GKC была протестирована на защитную эффективность в нерандомизированном исследовании с участием 225 576 субъектов в возрасте от 16 до 60 лет; 112 143 человека получили две основные дозы с интервалом в 14 дней и бустерную дозу через 6 месяцев; 113 433 человека не были вакцинированы. Две группы были схожи по возрастному распределению.В течение 3 лет наблюдения среди непривитых было выявлено 22 случая ГЛПС на 337 812 человеко-лет, что составляет 6,51 на 100 000 человек, по сравнению с отсутствием у вакцинированных 334 086 человеко-лет, снижение на 100%. 25

    Некоторые производители адаптировали свои процессы с первичных клеток песчанок или хомяков до непрерывных клеток Vero. Очищенная двухвалентная вакцина на основе клеток Vero, вводимая двумя дозами, разделенными 14 днями, индуцировала нейтрализующие антитела против вируса HTN и вирусов SEO в 90% случаев.12% (73/81) и 91,35% (74/81) взрослых добровольцев соответственно. 7 Легкие системные реакции наблюдались у 3,66% (12/328), а легкие местные реакции - у 1,83% (6/328) реципиентов вакцины. 26 Профили иммуногенности и безопасности полученной из клеток Vero очищенной бивалентной вакцины у детей и пожилых людей были одинаковыми. 27

    Основываясь на приведенных выше данных, для очищенных двухвалентных GKC-, PHK- и Vero-клеток рекомендован график из двух первичных доз с интервалом в 14 дней плюс бустер через 6 месяцев. вакцина.

    Постлицензионное ретроспективное исследование было проведено для измерения долгосрочной эффективности вакцины GKC среди 24 556 взрослых в возрасте от 16 до 60 лет в 21 деревне, расположенной в гиперэндемичном районе провинции Шэньси. 28 Показатели заболеваемости HFRS сравнивались между вакцинированными и невакцинированными взрослыми: 0,06% (4/6828) против 3,09% (27/875), соответственно, в течение первых 5 лет после вакцинации; 0,18% (10/5707) против 1,53% (28/1827) в годы с 6 по 10; 0,11% (5/4673) против 0.96% (26/2719) для детей от 11 до 14 лет; и 0,29% (5/1713) против 2,80% (6/214) в возрасте от 15 до 17 лет. Таким образом, эффективность вакцины была оценена в 98,06%, 88,24%, 88,54% и 89,64% соответственно за четыре периода исследования. Эффективность была занижена, поскольку год начала ГЛПС был неизвестен для 36 случаев, все из которых принадлежали к невакцинированной группе и не были включены в анализ. 10 Общий уровень атаки HFRS составил 0,13% (24/18921) у вакцинированных и 2,18% (123/5635) у невакцинированных субъектов, т.е. снижение на 94.04%. 28

    Долгосрочное исследование моновалентной вакцины против вируса SEO, полученной из PHK, также проводилось среди взрослых в возрасте от 15 до 60 лет в районе с преобладанием вируса SEO с 1995 по 2005 год. 11 Были получены только три первичные дозы вводится в 0, 7 и 28 дней без ревакцинации. Семь случаев HFRS были обнаружены у 1 467 188 субъектов в группе вакцинированных, показатель 0,48 на 100 000, и 412 случаев были обнаружены у 6 379 278 контрольных групп, показатель 6,46 на 100 000, с общим снижением на 92.61% (95% ДИ, 87,09–98,13%) за 11 лет исследования. Эффективность вакцины оценивалась в 100% в течение первого года, 95,56% для второго года и 92,61% для 11-го года. Снижение ставок в другие годы составило примерно 92%. 29

    Вакцина от вируса HTN, производного от SMB, также была разработана в Республике Корея и доступна для лиц из групп риска. Заболеваемость ГЛПС в Китае и Корее снизилась за последние 10 лет с введением вакцинации и, вероятно, что более важно, из-за урбанизации, экономического развития сельских районов, ведущего к улучшенным (цементным) домам, а также практики сбора и хранения зерна, что привело к снижение воздействия резервуара грызунов.Эта тенденция наиболее очевидна в быстро развивающихся регионах юго-востока Китая и, вероятно, сохранится в других регионах, что приведет к снижению заболеваемости и, возможно, к прекращению плановой вакцинации в эндемичных провинциях.

    Филогеографический анализ геморрагической лихорадки у пациентов с почечным синдромом с использованием мультиплексной ПЦР секвенирования нового поколения

    Заявление об этике

    Образцы человека были предоставлены с информированного согласия. Исследование было одобрено и проводилось в соответствии с этическими принципами Комитета по уходу и использованию животных Корейского университета (KUIACUC) Корейского университета.Отлов грызунов живыми на военных полигонах и объектах США был одобрен USFK в соответствии с Положением USFK 40–1 «Профилактика, наблюдение и лечение геморрагической лихорадки с почечным синдромом». Грызунов доставили в Корейский университет, где они были подвергнуты эвтаназии путем сердечной пункции и сбора тканей под изофлурановой анестезией в соответствии с процедурами, утвержденными протоколом KUIACUC (№ 2010–212).

    Сбор образцов

    Образцы цельной крови или сыворотки пациентов с HFRS-военными были предоставлены столичным госпиталем вооруженных сил Кореи, провинция Кёнги, и общественным госпиталем армии Брайана Аллгуда, Сеул, Республика Корея.Сыворотку экстрагировали центрифугированием при 4000 об / мин при 4 ° C в течение 5 минут и затем хранили при -80 ° C. A. agrarius экземпляра были собраны на военных полигонах и объектах США недалеко от демилитаризованной зоны в провинциях Кёнги и Канвон, Республика Корея, с использованием разборных живых ловушек Sherman (8 на 9 на 23 см; Х. Б. Шерман, Таллахасси, Флорида, США). Ловушки размещались с интервалом 4–5 м и собирались ежедневно в течение 1–3 дней.

    Тест на антитела с непрямой иммунофлуоресценцией

    Сыворотку разводили 1:32 и помещали в дублирующие лунки с фиксированными в ацетоне клетками Vero E6, инфицированными HTNV, а затем инкубировали при 37 ° C в течение 30 минут.После трехкратной промывки лунок физиологическим раствором с фосфатным буфером (PBS) в лунки добавляли конъюгированные с флуоресцеинизотиоцианатом козьи антитела к мышиному иммуноглобулину G (IgG) (ICN Pharmaceuticals, Laval, Canada). Лунки инкубировали при 37 ° C в течение 30 мин, трижды промывали PBS, а затем исследовали под флуоресцентным микроскопом. Обнаружение вирус-специфической флуоресценции свидетельствует о HTNV-инфекции.

    Экстракция РНК и ОТ-ПЦР

    A.agrarius легкие ткани гомогенизировали механически, используя TissueLyser (MP Biomedicals, Санта-Ана, США), и к сыворотке человека добавляли раствор реагента TRI (Ambion, Остин, США). Тотальную РНК экстрагировали с использованием набора Hybrid R TM (GeneAll, Сеул, Республика Корея) в соответствии со спецификациями производителя. кДНК генерировали с использованием M-MLV (Promega, Мэдисон, США) со случайным гексамером или OSM55 с последующей вложенной ПЦР в 25 мкл реакционной смеси, содержащей 250 мкМ dNTP, 2 мМ MgCl 2 , 1 ед. ДНК Super-Therm Taq полимераза (JMR Holdings, Лондон, Великобритания), 1.5 мкл матрицы кДНК и 5 мкМ каждого праймера 28 . Первоначальная денатурация проводилась при 94 ° C в течение 4 минут, затем следовали 6 циклов денатурации при 94 ° C в течение 30 секунд, отжиг при 37 ° C в течение 30 секунд, элонгация при 72 ° C в течение 1 минуты с последующими 30 циклами денатурации. при 94 ° C в течение 30 секунд, отжиг при 42 ° C в течение 30 секунд, элонгация при 72 ° C в течение 1 мин и затем элонгация при 72 ° C в течение 5 минут с использованием системы ProFlex PCR (Life Technology, Карлсбад, США).

    Геномное секвенирование HTNV из

    A.agrarius

    Вирусная кДНК из тканей легкого A. agrarius была синтезирована со случайными гексамерами или OSM55 (5'-TAGTAGTAGACTCC-3 '). Обычную вложенную ПЦР проводили с использованием смеси Solg TM 2X h-Taq PCR Smart (Solgent, Тэджон, Республика Корея). Программа ПЦР представляет собой начальную денатурацию при 95 ° C в течение 15 минут, затем 40 циклов денатурации при 95 ° C в течение 20 секунд, отжиг при 50 ° C в течение 40 секунд и элонгацию при 72 ° C в течение 1 минуты, а затем цикл 72 ° C в течение 3 мин.

    Мультиплексная ПЦР

    Праймеры для мультиплексной ПЦР

    были разработаны с использованием редактора выравнивания последовательностей BioEdit (версия 7.1.11). Каждый праймер для мультиплексной ПЦР L, M и S сегментов HTNV был приготовлен и смешан. Синтезированная выше кДНК была дважды амплифицирована для HTNV с использованием смесей праймеров и смеси Solg TM 2X Uh-Taq PCR Smart (Solgent) в соответствии с инструкциями производителя. Первую ПЦР проводили в 25 мкл реакционной смеси, содержащей 12,5 мкл предварительной смеси 2X Uh, 1,0 мкл матрицы кДНК, 1.0 мкл каждой смеси праймеров и 10,5 мкл дистиллированной воды (DW). Первоначальную денатурацию выполняли с помощью цикла 95 ° C в течение 15 минут, затем 40 циклов 95 ° C в течение 20 секунд, 50 ° C в течение 40 секунд, 72 ° C в течение 1 минуты и цикла окончательной элонгации при 72 ° C. на 3 мин. Вторую ПЦР проводили в 25 мкл реакционной смеси, содержащей 12,5 мкл предварительной смеси 2X Uh, 1,0 мкл первого продукта ПЦР, 1,0 мкл каждой смеси праймеров и 10,5 мкл DW. Первоначальную денатурацию проводили при 95 ° C в течение 15 минут, затем 25 циклов при 95 ° C в течение 20 секунд, 50 ° C в течение 40 секунд, 72 ° C в течение 1 минуты и окончательное удлинение при 72 ° C в течение 3 минут.Последовательности праймеров показаны в дополнительных данных 1.

    Секвенирование следующего поколения

    Продукт мультиплексной ПЦР был приготовлен с использованием набора для подготовки проб TrueSeq Nano DNA LT (Illumina, Сан-Диего, США) в соответствии с инструкциями производителя для создания библиотек секвенирования MiSeq. . Образцы подвергали механической фрагментации с помощью сфокусированного ультразвукового прибора M220 (Covaris, Woburn, США). Ампликон кДНК отбирали по размеру, поли-А-хвосту и лигировали с индексами и адаптерами с последующим обогащением 5 мкл смеси праймеров для ПЦР и 20 мкл смеси для усиленной ПЦР.Контроль качества библиотек осуществляли с использованием набора микросхем Agilent DNA 1000 или набора высокочувствительных ДНК-микросхем на биоанализаторе (Agilent Technologies, Санта-Клара, США). Количественную оценку библиотек проводили с помощью ПЦР в реальном времени с использованием набора для количественной оценки библиотек для платформ секвенирования Illumina (KAPA Biosystems, Уилмингтон, США) с использованием системы ПЦР в реальном времени Quantstudio 6 Flex (Life Technologies). Библиотеки нормализовали до концентрации 12 пМ с использованием гибридизационного буфера. Секвенирование выполняли на настольном секвенаторе MiSeq (Illumina) с 2 × 150 п.н. с использованием реагента MiSeq V2 (Illumina).Файлы Illumina FASTQ были импортированы и проанализированы с использованием программного обеспечения CLC Genomics Workbench (Qiagen, Waltham, USA).

    Филогенетический анализ

    Геномную последовательность L, M и S сегментов HTNV из легочных тканей A. agrarius и сыворотки пациентов выровняли с использованием метода Clustal W с программой Lasergene, версия 5 (DNASTAR). Филогенетический анализ проводился с использованием методов Neighbor-Joining (NJ) и Maximum Likelihood (ML) (MEGA 5.2) 29 . Топологии оценивались методом начальной загрузки 1000 итераций.

    Анализ рекомбинации

    Наборы последовательностей для L, M и S сегментов HTNV были выровнены и проанализированы с использованием программного пакета программы обнаружения рекомбинации 4 (RDP4) 30 . Событие рекомбинации, оцененное с помощью RDP4, считалось значимым, если оно удовлетворяло по крайней мере 2 критериям, когда значение P (p) <0,05 и консенсусная оценка рекомбинации RDP (RDPRCS) составляла> 0,6 31 . Когда p <0,05 и RDPRCS было между 0,4 и 0,6, событие рекомбинации было возможным.RDPRCS <0,4 при p <0,05 указывает на отклонение события рекомбинации. Полногеномные последовательности L, M и S сегментов HTNV из рекомбинантов, родителей, а также внутри и вне групп были использованы для генерации ML-анализа для вывода эволюционных деревьев в MEGA 5.2, соответственно.

    Вирусные геморрагические лихорадки - Симптомы и причины

    Обзор

    Вирусные геморрагические (hem-uh-RAJ-ik) лихорадки - это инфекционные заболевания, которые могут вызывать тяжелые, опасные для жизни заболевания.Они могут повредить стенки крошечных кровеносных сосудов, вызывая их утечку, и могут препятствовать свертыванию крови. Возникающее в результате внутреннее кровотечение обычно не опасно для жизни, но болезни могут быть опасны.

    Некоторые вирусные геморрагические лихорадки включают:

    • Денге
    • Эбола
    • Ласса
    • Марбург
    • Желтая лихорадка

    Эти болезни чаще всего встречаются в тропических регионах. В Соединенных Штатах люди, которые их заболевают, обычно недавно побывали в одной из этих областей.

    Нет лекарства от вирусной геморрагической лихорадки. Есть вакцины только для нескольких типов. Пока не будут разработаны дополнительные вакцины, лучший подход - профилактика.

    Товары и услуги

    Показать больше товаров от Mayo Clinic

    Симптомы

    Признаки и симптомы вирусной геморрагической лихорадки зависят от заболевания. В общем, ранние признаки и симптомы могут включать:

    • Лихорадка
    • Усталость, слабость или общее недомогание
    • Головокружение
    • Боли в мышцах, костях или суставах
    • Тошнота и рвота
    • Диарея

    Симптомы, которые могут стать опасными для жизни

    Более серьезные симптомы включают:

    • Кровотечение под кожей, во внутренних органах или изо рта, глаз или ушей
    • Неисправности нервной системы
    • Кома
    • Делириум
    • Почечная недостаточность
    • Дыхательная недостаточность
    • Печеночная недостаточность

    Когда обращаться к врачу

    Лучшее время для посещения врача - это перед поездкой в ​​развивающуюся страну, чтобы убедиться, что вы получили все доступные прививки и проконсультировались перед поездкой, чтобы оставаться здоровым.

    Если у вас появятся признаки и симптомы по возвращении домой, поговорите с врачом, желательно с тем, кто имеет образование в области международной медицины или инфекционных болезней. Сообщите врачу, куда вы побывали.

    Причины

    Вирусные геморрагические лихорадки передаются при контакте с инфицированными животными или насекомыми. Вирусы, вызывающие вирусные геморрагические лихорадки, обитают у различных животных и насекомых-хозяев. Чаще всего хозяевами являются комары, клещи, грызуны или летучие мыши.

    Некоторые вирусные геморрагические лихорадки также могут передаваться от человека к человеку.

    Как передается?

    Некоторые вирусные геморрагические лихорадки передаются через укусы комаров или клещей. Другие передаются при контакте с инфицированными жидкостями организма, такими как кровь, слюна или сперма. Некоторые разновидности могут попадать в дыхательные пути с фекалиями или мочой инфицированных крыс.

    Если вы путешествуете в район, где распространена конкретная геморрагическая лихорадка, вы можете заразиться там, но у вас не появятся симптомы до тех пор, пока вы не вернетесь домой.В зависимости от типа вируса развитие симптомов может занять от двух до 21 дня.

    Факторы риска

    Проживание в районе или поездка в район, где распространена конкретная вирусная геморрагическая лихорадка, увеличивают ваш риск заражения этим конкретным вирусом. Другие факторы, которые могут увеличить ваш риск, включают:

    • Работа с инфицированными
    • Забой или употребление в пищу инфицированных животных
    • Совместное использование игл для внутривенного введения наркотиков
    • Незащищенный секс
    • Работа на открытом воздухе или в зданиях, кишащих крысами
    • Контакт с инфицированной кровью или другими биологическими жидкостями

    Осложнения

    Вирусные геморрагические лихорадки могут вызывать:

    • Септический шок
    • Полиорганная недостаточность
    • Смерть

    Профилактика

    Профилактика вирусных геморрагических лихорадок - непростая задача.Если вы живете, работаете или путешествуете в районы, где эти заболевания распространены, защитите себя от инфекции, используя соответствующие защитные барьеры при работе с кровью или биологическими жидкостями. Например, наденьте перчатки и защитную маску для глаз и лица. Меры предосторожности также включают осторожное обращение, дезинфекцию и утилизацию лабораторных образцов и отходов.

    Сделайте прививку

    Вакцина против желтой лихорадки обычно считается безопасной и эффективной. Однако в редких случаях могут возникнуть серьезные побочные эффекты.Вакцина против желтой лихорадки не рекомендуется детям младше 9 месяцев; беременным, особенно в первом триместре; или люди с ослабленной иммунной системой.

    Также существует вакцинация против Эболы, которая защищает от одного типа Эболы. Узнайте в Центрах по контролю и профилактике заболеваний статус стран, которые вы посещаете - для въезда в некоторые из них требуются сертификаты о вакцинации.

    Избегайте комаров и клещей

    Делайте все возможное, чтобы избегать этих насекомых, особенно при поездках в районы, где наблюдаются вспышки вирусных геморрагических лихорадок.Носите светлые длинные брюки и рубашки с длинными рукавами или, что еще лучше, одежду с перметриновым покрытием. Не наносите перметрин непосредственно на кожу.

    По возможности избегайте находиться на улице в сумерках и на рассвете, когда комары наиболее активны, и нанесите репеллент от комаров с концентрацией ДЭТА от 20% до 25% на кожу и одежду. Если вы остановились в палаточных лагерях или в отелях, используйте надкроватные сетки и противомоскитные спирали.

    Защита от грызунов

    Если вы живете там, где наблюдаются вспышки вирусной геморрагической лихорадки, примите меры, чтобы грызуны не появлялись в вашем доме:

    • Держите корм закрытым и храните в контейнерах, защищающих от грызунов.
    • Храните мусор в контейнерах, защищающих от грызунов, и часто чистите контейнеры.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *