Прикорневое окрашивание: Прикорневое окрашивание волос (до 5см)

Содержание

Прикорневое окрашивание

Прикорневое окрашивание

ПРИКОРНЕВОЕ ОКРАШИВАНИЕ

 

Окрашенные у специалиста волосы рано или поздно нуждаются в прикорневом окрашивании, которое нужно проводить по мере того, как ваши корни начнут отрастать. Чем прикорневое окрашивание отличается от полного? Все очень просто. При полном, мастер принимается прокрашивать волосы полностью вследствие того, что клиент передумал носить прежний оттенок и ему захотелось сменить имидж. К корневому окрашиванию девушки, как правило, прибегают вследствие того, что через некоторое время после посещения салона ее корни отрасли, и чтобы приняли более аккуратный и ухоженный вид, нужно провести соответствующую процедуру. При этом краситель наноситься только на прикорневую зону, не затрагивая при этом остальную часть волос и концы.

Техника прикорневого окрашивания ничем не отличается от обычного. Мастер разделяет волосы на проборы и наносит на корни красящий состав.

Важно: мастера используют в своей практике исключительно краску без аммиака, которая не оказывает на кожу головы вредного воздействия и гипоаллергенна, что особенно актуально для людей с чувствительной кожей.

По истечении времени краска смывается специальным шампунем с кондиционером и высушивается обычным способом.

Существует расхожее мнение, что при окрашивании корней виден четкий переход цветов. Однако, с этим мнением сложно согласиться. Если специалист действительно опытный, то оттенок волос сольется воедино.

Чтобы результат оправдал ожидания, доверяйтесь только профессионалу, который знает, как могут ваши волосы «прореагировать» на тот или иной цвет, а также сможет посоветовать самый оптимальный для вас вариант. Наши опытные мастера Вас не подведут.

Преимущества прикорневого окрашивания

Финансовая сторона. Вам не нужно будет оплачивать за покраску волос по всей длине. Несомненно, экономично.

Любая краска, даже самая дорогая и качественная, так или иначе, оказывает не самое благоприятное воздействие на волосы, особенно, если они сильно повреждены. В результате полного окрашивания, реагент воздействует на волосы полностью, тем самым повреждая и посеченные кончики.

Другое дело – прикорневое окрашивание, которое воздействует только на корни, не затрагивая при этом поврежденные участки.

Прикорневое мелирование — цена прикорневого мелирования в Москве, сколько стоит сделать мелирование корней волос на YouDo

Если вам нужна услуга прикорневого мелирования волос в Москве, то обратитесь к исполнителям платформы Юду. Мастера владеют разными техниками окрашивания, а наиболее универсальный способ мелирования на фольгу, используемый специалистами, позволяет экспериментировать с волосами. Такой метод идеально подходит как для коротких, так и для длинных волос. На прикорневое мелирование цена доступная.

Особенности прикорневого мелирования

Прикорневое мелирование считается щадящей процедурой, так как осветляют мастера только пряди, а остальные волосы остаются нетронутыми.

Процедура поможет получить ряд преимуществ, среди которых:

  • придание визуального объёма
  • подчёркивание красоты волос
  • придание блеска волосам

Прикорневое мелирование позволяет замаскировать седые волосы и сделать облик интереснее, не прибегая к полной окраске волос.

Этапы проведения процедуры

Исполнители Юду выполнят мелирование на дому по выгодной стоимости. Опытный специалист, приехавший по адресу, предоставит консультации по уходу за волосами. На прикорневое мелирование цена договорная.

Выбранный мастер, используя современные техники и косметические средства, выполнит мелирование в несколько этапов, среди которых:

  • предварительная подготовка волос
  • подбор краски в соответствии с пожеланиями
  • осветление волос при помощи фольги
  • обработка специальными масками

Оформление заказа на Юду

Закажите прикорневое мелирование у исполнителей Юду через онлайн-форму заказа. Выберите мастера в каталоге на сайте YouDo, и он приедет к вам на дом в назначенный час. Выезд возможен в любое время. Все исполнители являются надёжными мастерами своего дела.

Закажите у исполнителей любую другую недорогую услугу:

  • наращивание волос
  • профессиональное тонирование
  • химическую завивку
  • создание прически
  • стрижку волос

Стоимость услуг исполнителей низкая. Цены услуг, выполняемых на дому, ниже, чем во многих салонах красоты.

Окрашивание волос — Доступная Территория, Москва

18 июля открытие ул академика Виноградова 1 корпус 1. Телефон +7(495)5066446 (Тёплый стан)

Окрашивание волос WELLA ILLUMINA и FREELIGHTS

(премиальное окрашивание, Германия)

 

Короткие

волосы

Средние

волосы

Длинные

волосы

Окрашивание в 1 тон 2800/3350 3500/4200 4200/5050

Окрашивание прикорневое (до 2 см. )

Окрашивание до 8 прядей

2800/3350  

Мелирование 1/2 + тонирование

Мелирование крем-краской

Блондирование прикорневое (до 2 см.) + тонирование

3100/3700 3800/4550 4500/5400

Сложное окрашивание

4000/4800
5000/6000 6000/7200

Изменение цвета (с предварительной смывкой/блондированием)

5500/6600 6500/7800 7500/9000

Дополнительное блондирование

2000/2400 2400/2900 2800/3350

Мойка и сушка по форме  входит в стоимость любой услуги окрашивания

При длине волос ниже локтя и/или нарощенных волосах стоимость процедуры увеличивается на 20%

Окрашивание ESTEL  (Россия)

  Короткие Средние
Длинные
волосы волосы волосы
Окрашивание прикорневое (до 2 см. ) 1600/1900

Окрашивание в 1 тон

1600/1900 2000/2400 2400/2900

Мелирование крем-краской

Мелирование 1/2 + тонирование

Блондирование прикорневое (до 2 см.) + тонирование

2000/2400 2500/3000 3000/3600

Сложное окрашивание

2800/3350 3400/4100 4000/4800

Изменение цвета (с предварительным смытием/блондированием)

3700/4450 4600/5500 5500/6600

Дополнительное блондирование

1500/1800  1800/2200  2200/2600 

Мойка и сушка по форме  входит в стоимость любой услуги окрашивания

 

При длине волос ниже локтя и/или нарощенных волосах стоимость процедуры увеличивается на 20%

Окрашивание  WELLA (Германия)

  Короткие Средние Длинные
  волосы волосы волосы

Прикорневое (до 2 см)

Окрашивание до 8 прядей

 

2300/2750
Окрашивание в 1 тон 2300/2750 3000/3600
3700/4450

Мелирование крем-краской

Мелирование 1/2 + тонирование

Блондирование прикорневое (до 2 см. ) + тонирование

2800/3350 3500/4200 4200/5050
Сложное окрашивание 3500/4200 4500/5400 5500/6600
Изменине цвета (с пердварительной смывкой/блондированием) 5000/6000 6000/7200 7000/8400
Дополнительное блондирование 2000/2400 2400/2900 2800/3350

Смывка без изменения качества волос Color renew

(стоимость за 1 нанесение)

2300/2750 2500/3000 2800/3350

Мойка и сушка по форме  входит в стоимость любой услуги окрашивания

При окрашивании краской клиента, цена услуги не меняется, при этом мастер не несёт ответственности за результат окрашивания

При длине волос ниже локтя и/или нарощенных волосах стоимость процедуры увеличивается на 20%.

Скрытое окрашивание волос — что это такое и 26 крутых идей с фото

Это очень удобно! При желании вы можете «спрятать» цвет за прядями природных оттенков. А когда захочется — продемонстрировать окрашенные волосы с помощью укладки

Эта ситуация знакома, пожалуй, каждому мастеру-колористу: клиент, с одной стороны, хочет заметно освежить образ и даже задумывается о радикальных экспериментах с яркими цветами, а с другой — все-таки боится, что результат окажется слишком смелым. Исключить подобные страхи поможет техника скрытого окрашивания.

Что такое скрытое окрашивание волос?

Скрытое окрашивание — это техника, которая позволяет спрятать цветные пряди или даже целую «прослойку» яркого оттенка в основной массе волос так, чтобы их не было видно, пока вы не распустите волосы или не соберете их в прическу, открывающую «засекреченный» слой.

© butterflyloftsalon

Как правило, при потайном окрашивании волос цвет наносят на волосы средних или нижних слоев сзади. Иногда его распределяют не по всей длине, а «растягивают» по прикорневой зоне. Так окрашивание можно замаскировать еще надежнее.

Вернуться к оглавлению

Оттенки для скрытого окрашивания

Чаще всего скрытые пряди делают броскими по цвету — иначе нет никакого смысла: зачем прятать оттенки, выбор которых никак не связан с риском и смелыми решениями?

© fedorinaanna

Так как гамма доступных оттенков очень широка, определиться бывает трудно. Лучше всего — оценить, насколько тот или иной вариант подходит вам по цветотипу.

Фиолетовое окрашивание

На светлых волосах хорошо выглядят модные сейчас пастельные оттенки лаванды и сирени. Чаще всего к этим цветам добавляют немного розовой пастели. Брюнетки же делают скрытое окрашивание со «светящимся» фиолетовым неоном — более ярким и насыщенным. Потому что иначе скрытое окрашивание на черных волосах просто не будет заметно.

© mishellehair

Синее окрашивание

Оттенков синего (цвет сейчас на пике моды) очень много. Во-первых, конечно, синий электрик, который идет и брюнеткам, и шатенкам, и блондинкам. Еще один фаворит — нежно-голубой (он отлично выглядит на светлых волосах). Отдельный тренд — оттенок темного денима, синего с нотками темно-серого и темно-зеленого, которые делают его приглушенным, но от этого не менее выразительным.

© nika_name_92

Розовое окрашивание

В скрытом окрашивании можно использовать сразу несколько розовых оттенков — от пастельного до фуксии и неона. Соединяйте их с помощью градиента или носите на разных прядях.

© lonelinwess

Зеленое окрашивание

Кто-то выбирает очень мягкий и девичий мятно-зеленый оттенок. А кому-то больше по душе едкий кислотно-зеленый неон, который, кстати, хорошо сочетается с другими яркими цветами: синим, красным, розовым.

© toridar_hair

Красное окрашивание

Красный цвет точно затеряется в рыжих волосах, а вот блондинкам и брюнеткам его вполне можно взять за основу скрытого окрашивания.

© lorealhair

Скрытый блонд

Если у вас темные волосы и вы предпочитаете естественные образы, попробуйте спрятать под верхними слоями несколько светлых прядей. Этот акцент будет заметен в движении, если распустить волосы или собрать их соответствующим образом.

© lorealpro

Радужное окрашивание

© cryistalchaos

В скрытом виде контрастные оттенки не видны. Тем больший эффект произведет на окружающих «проявление» сразу нескольких цветов. Берите широкую палитру и создавайте эффектные радужные переливы.

Вернуться к оглавлению

Кому подойдет скрытое окрашивание?

Сомневаетесь, подойдет ли вам скрытое окрашивание? На самом деле ограничений нет. Каждый сможет подобрать вариант, который будет выглядеть гармонично.

Темные волосы

На темных волосах оптимальный контраст создадут неоновые оттенки.

© lorealhair

А если не хочется, чтобы яркость зашкаливала, скройте на средних слоях приглушенные оттенки зеленого, синего или, скажем, розового, чтобы они лишь мягко намекали на вашу любовь к экспериментам с цветом.

Русые волосы

На русых волосах даже достаточно сдержанные цвета будут заметны. Выбрать при этом можно практически любой оттенок — разве что пастель на них выглядит блеклой. Но если сначала обесцветить пряди, то и приглушенные оттенки смогут превратиться в полноценный акцент.

© listsalon

Светлые волосы

У блондинок самый широкий выбор: от молочной пастели до ослепительно яркого неона. И первое, и второе отлично сочетается с блондом и заметно выделяется на его фоне, но может быть искусно скрыто под верхним слоем волос.

© butterflyloftsalon

Рыжие волосы

Девушкам с рыжими волосами нужно подбирать для скрытого окрашивания оттенки, которые не будут сливаться с их природным оттенком. Поэтому красно-розовая гамма вряд ли подойдет. Ищите варианты, способные создать выразительный контраст с огненным фоном.

Вернуться к оглавлению

Техника скрытого окрашивания для волос разной длины

Для коротких волос

Спрятать цветные пряди, если волосы совсем короткие, вряд ли получится. Поэтому девушкам, которые носят стрижку пикси и высокое каре, колористы предлагают красить корни по нескольким центральным проборам. В этом случае игра цвета откроется окружающим только в том случае, если вы соответствующим образом зачешете волосы. С длиной чуть выше плеч можно уже смело красить нижние пряди.

© fedorinaanna

Для волос средней длины

Больше возможностей открывается для тех, кто носит волосы длиной до плеч или ниже. В этом случае уже можно сделать цветными целые пряди от корней до кончиков. Открыть свой секрет вы сможете, собрав волосы в низкий хвост или пучок.

© rastamamadread

Для длинных волос

В этом случае цветными можно сделать не просто несколько прядей, а целую секцию или даже слой волос на среднем уровне.

© nataliakop

Вариант с окрашиванием корней и «рястяжкой» цвета по направлению к середине тоже можно взять на заметку. Если сделать полупучок, собрав в него верхнюю часть волос, цветные корни предстанут взору окружающих во всей своей контрастной красе.

Вернуться к оглавлению

Модные фотоидеи причесок со скрытым окрашиванием волос

Секретный слой одного цвета

© ziabyrd

Самое простое — сделать контрастную одноцветную «прослойку» между слоями волос исходного оттенка. Она будет видна в движении, если вы распустите волосы, и может стать интересным сюрпризом в прическе.

Скрытая радуга

© butterflyloftsalon

Популярность использования широкой палитры цветов в скрытом окрашивании обусловлена тем, что эффект сюрприза усиливается многократно. Радуга — это, кстати, очень популярный вариант скрытого окрашивания, который поднимает настроение своей яркостью и хорошо выглядит как на броском фоновом цвете, так и на естественном.

Полосатое окрашивание

© butterflyloftsalon

Создавать радужный эффект в скрытом окрашивании можно по-разному. Один из вариантов — украсить пряди в спрятанном слое горизонтальными полосками. Границы между цветами можно размыть, чтобы получился градиент, или, напротив, оставить резкими и графичными.

© butterflyloftsalon

Пиксельное окрашивание

© olga_belkowa

Популярным трендом стало окрашивание с эффектом пиксельного рисунка на глади прямых волос. Из цветных квадратиков складываются целые узоры; кто-то готов демонстрировать их нон-стоп, а кто-то хочет, чтобы эта деталь удивила друзей и знакомых, например, на вечеринке. Тут-то и пригодится техника скрытого окрашивания.

Цветные корни

© fedorinaanna

Прикорневое окрашивание, как мы уже упоминали выше, оптимально для девушек с короткими волосами. Результаты эксперимента можно показать, сделав «правильный» пробор.

Скрытые рисунки

© fedorinaanna

Это, пожалуй, самый смелый вариант скрытого окрашивания. Часть нижнего слоя волос сзади коротко подстригают, после чего с помощью машинки выбривают рисунки и раскрашивают их.

© butterflyloftsalon

Под общей массой волос рисунка видно не будет, но все откроется, когда вы соберете волосы в высокую прическу.

Советуем почитать:

Вернуться к оглавлению

Как сделать скрытое окрашивание в домашних условиях?

Теперь разберемся, каким должен быть порядок действий, если вы хотите сделать скрытое окрашивание волос в домашних условиях.

  1. 1

    Выбор красителя

    Первым делом нужно решить, как долго вы готовы продержаться в экспериментальном образе. Не дольше недели или двух? Тогда выбирайте временный краситель, который постепенно смывается по мере использования шампуня. Например, бальзам Colorista Washout от L’Oréal Paris.

    Им, кстати, очень удобно пользоваться. Он больше похож на маску для волос. Ничего не нужно смешивать. Просто распределяете по нужным прядям и после 15–30 минут выдержки смываете средство водой. Можно также попробовать желе для окрашивания волос Colorista Hair Makeup. Подробнее о том, как его наносить, мы рассказывали в этом видео.

    Что касается долговременного результата, то добиться его поможет перманентный краситель. Яркие оттенки есть в коллекции The Vivids из серии Color Sensation от Garnier.

  2. 2

    Подготовка к окрашиванию

    Заранее протестируйте краситель на небольшом участке кожи. Подготовьте все нужные вам принадлежности: расческу с тонким хвостиком, кисть, емкости для краски, перчатки, полотенце (накиньте его на плечи, чтобы не испачкать одежду).

    © Getty

    Для процедуры долговременного окрашивания мыть голову не нужно. Если нужен временный эффект, то подходящие средства наносят на чистые волосы.

  3. 3

    Работа с цветом

    Смешайте компоненты красящего состава и нанесите на выбранные вами пряди, собрав оставшиеся волосы так, чтобы на них не попала краска. Ждать действия формулы придется от 15–20 до 30–40 минут — в каждом конкретном случае определить время экспозиции поможет инструкция. Затем останется только смыть краску водой и нанести закрепляющий цвет бальзам.

  4. 4

    Укладка

    В полной мере оценить результат поможет соответствующая укладка — например, волнами.

    © kawaicat_white

Вернуться к оглавлению

Правила ухода за волосами после окрашивания

Чтобы сохранить цвет (пусть и скрытый) на волосах как можно дольше, следуйте советам стилистов. Во-первых, вам понадобится шампунь для окрашенных волос. Благодаря мягкой формуле он почти не вымывает цвет. Попробуйте, например, «Fructis. Годжи. Стойкий цвет» от Garnier.

Во-вторых, чаще увлажняйте и питайте волосы. Добавьте в свой бьюти-рацион маски и несмываемый бальзам: они помогут избежать проблемы сухости волос, которая часто возникает после окрашивания.

Как вам идея скрытого окрашивания? Вы решились бы на такое? Расскажите в комментариях.

Вернуться к оглавлению

Прикорневое мелирование на отросшие корни (фото)

На чтение 7 мин. Просмотров 43.6k. Опубликовано Обновлено

Прикорневое мелирование – это идеальный способ сделать образ свежим, ярким, придать прическе объем и скорректировать цвет без вреда для шевелюры. Он подходит как для светлых, так и для темных волос.

Что представляет собой это мелирование?

Прикорневым мелированием называют процедуру окрашивания отросшей корневой зоны, которая позволяет скорректировать оттенок без особого ущерба. Чем же прикорневое мелирование отличается от традиционного?

  • Осветляющий состав наносится лишь на корни – остальная шевелюра остается не у дел. Если этим пренебречь и прокрасить всю длину, пряди сильно пострадают (особенно на концах). Конечно, поначалу это будет не так заметно, но с каждым следующим осветлением состояние волос будет только ухудшаться;
  • Процедура занимает намного меньше времени, чем традиционное окрашивание;
  • Ее можно смело делать без сложных приспособлений;
  • Коррекция позволяет сохранить четкость рисунка и не нарушить порядок темных и светлых волос. Дело в том, что провести повторное окрашивание по всей длине и при этом не задеть неокрашенные пряди практически невозможно. Итогом такой покраски станет монохромный цвет.

Важно! При выполнении коррекции нужно точно повторить не только оттенок краски, но и частоту отбора, а также ширину прядок! Только тогда результат будет таким же красивым, как на представленных фото.

Как делают прикорневое мелирование?

Решив выполнить процедуру коррекции в домашних условиях, внимательно ознакомьтесь с этой подробной инструкцией.

Вам понадобятся:

  • Осветлитель;
  • Тонирующее средство;
  • Расческа;
  • Кисточка;
  • Емкость для смешивания состава;
  • Полотенце;
  • Шампунь;
  • Бальзам;
  • Зажимы;
  • Фольга, нарезанная полосками.

Дальнейшая техника прикорневого мелирования выглядит так:

  1. Хорошенько расчешитесь.
  2. Разделите шевелюру на 3 равнозначных зоны – среднюю и боковые (правую и левую). Каждую такую зону можно заколоть зажимом.
  3. Определите порядок набора («шаг» мелирования) и ширину окрашенных прядок.
  4. Приготовьте осветлитель. Можно использовать как обесцвечивающий порошок, так и краситель «спец блонд». Первые применяют для осветления очень темных волос. В этом случае порошок смешивают с окислителем в пропорции 1:1,5, 1:1 или 1:2 в зависимости от производителя. Консистенция средства должна напоминать густую сметану и хорошо наноситься (не вытекать из фольги!). Также помните о том, что порошок в процессе работы набухает и увеличивается в размерах. Чтобы средство не вытекло наружу и не оставило пятен на остальных волосах, его нужно наносить с отступом 0,5 см от края куска фольги. К сожалению, «спец блонд» не дает той белизны, которую получают при помощи порошка, но и структуре волос он вредит намного меньше. Это лучший вариант для блондинок и шатенок. Для приготовления такого состава краску смешивают с окислителем в пропорции 1:2 или 1:1,5. По консистенции она более жидкая, потому от края фольги отступают сантиметр.
  5. Снимите первый зажим и подложите под прядь 1 отрезок фольги.
  6. Нанесите осветлитель с помощью специальной кисти. Начинать нужно с затылка.
  7. Заверните прядь фольгой, сделав небольшой конверт.
  8. Повторите процедуру с оставшимися зонами.
  9. Выдержите это средство от 15 до 40 минут. Время от времени приоткрывайте фольгу, чтобы оценить результат осветления.
  10. Снимите фольгу с волос.
  11. Вымойте пряди с шампунем.
  12. При выполнении процедуры на окрашенных волосах не забудьте сделать тонирование.
  13. Воспользуйтесь бальзамом.

Важно! У выполнения прикорневого мелирования в домашних условиях есть три важных противопоказания – полное отсутствие опыта, очень тонкие прядки и применение разных оттенков.

Популярные ошибки

Выполняя мелирование на отросшие корни, постарайтесь избежать распространенных ошибок, ведь они могут испортить ожидаемый эффект.

Ошибка №1. Обращение к другому мастеру. Делать коррекцию прикорневой зоны нужно у того же парикмахера, что и все мелирование, ведь у каждого из них — свой неповторимый «почерк». Как правило, хорошему специалисту достаточно одного взгляда на собственную работу, чтобы определиться с выбором нужного способа окрашивания.

Ошибка №2. Увеличение зоны окрашивания. Не допускайте покраски уже осветленных прядей и соблюдайте границу. В противном случае волосы, пережженные осветлителем, просто начнут выпадать.

Ошибка №3. Отсутствие растяжки между прикорневым мелированием и ранее окрашенными прядями. Хорошо растянув краску, мастер сделает границу практически незаметной. Чтобы сгладить переход, можно нанести щадящий тонирующий состав.

Ошибка №4. Проведение мелирования на чисто вымытые волосы. Перед проведением окрашивания отросших корней голову не стоит мыть как минимум 2 суток. За этот короткий срок пряди покроются пленкой из естественного жира, которая защитит шевелюру при покраске.

Ошибка №5. Использование дешевой и некачественной краски. Если вы рассчитываете на красивый результат, остановитесь на хорошей профессиональной косметике.

Ошибка №6. Слишком сильный окислитель. Воспользовавшись более слабым окислителем и увеличив время его выдержки, вы сможете получить светлый тон без желтизны.

Ошибка №7. Неправильный выбор цвета. Делая коррекцию мелирования на корнях, важно подобрать оттенок, который вам подойдет. Блондинкам к лицу медовый, бежевый и карамельный – они освежат лицо и сделают вас моложе. На светло-русой шевелюре прекрасно смотрятся платиновый и жемчужный. Подчеркнуть красоту средне-русых волос помогут золотисто-рыжие прядки. Что касается брюнеток, им можно остановиться на кофейных, шоколадных и каштановых оттенках.

Советы, как избежать ошибок при мелировании отросших корней:

Это интересно! Виды окрашивания волос — 15 лучших с фото

Как ухаживать за прикорневым мелированием?

Отросшее мелирование требует постоянного ухода, которое заключается в соблюдении нескольких важных правил.

Правило 1. Мойте голову шампунем для мелированных волос.

Правило 2. После каждого мытья пользуйтесь бальзамами, кондиционерами или масками. Желательно, чтобы они были той же марки, что и шампунь. Заметьте, ухаживать за мелированной шевелюрой можно только при помощи магазинной косметики. Домашние средства, особенно на основе масел, придадут вашей прическе некрасивый желтый тон.

К числу самых лучших марок можно смело отнести:

  • L’Oreal Professionnel Serie Expert Lumino Contrast — шампунь для мелированных волос, который восстанавливает поврежденную структуру и нормализует липидный баланс. Не утяжеляет пряди, не пересушивает кончики, придает прическе блеск, сохраняет эластичность;
  • L’Oreal Professionnel Lumino Contrast – несмываемый гель-флюид, содержащий силиконы. Средство обволакивает каждый волосок и делает шевелюру гладкой, мягкой и блестящей;
  • John Frieda Frizz-Ease Rehydrate Intensive Deep Conditioner – кондиционер для сухих волос, обладающий сильными питательными и увлажняющими свойствами, а также способствующий легкому и безболезненному расчесыванию;
  • Illumi Lights Schwarzkopf Professional – увлажняющий шампунь, имеющий большой спрос у известных мастеров. Обеспечивает прядям очень хороший уход, придает им шелковистость;
  • Lifetex Colour protection Wella Professional – бюджетный шампунь, питающий корни прядей и сохраняющий цвет.

Правило 3. Время от времени пользуйтесь тонирующей косметикой, нейтрализующей желтый оттенок. Для этих целей идеально подойдут тоники, бальзамы или шампуни серебристого или фиолетового цвета.

Правило 4. Подберите качественную расческу, которая не станет травмировать волосы во время расчесывания. Остановитесь на деревянных гребнях с редкими зубчиками, щетках с натуральным ворсом или же модных расческах Macadamia No Tangle Brush и Tangle Teezer, которые в один миг распутают колтуны, пригладят чешуйки прядей и сделают шевелюру гладкой и очень красивой.

Правило 5. Чтобы результат мелирования радовал вас долгое время, берегите шевелюру от хлорированной воды и прямых солнечных лучей. Они не только пересушивают пряди, но и способствуют быстрому появлению некрасивого желтого оттенка.

Правило 6. Регулярно наносите на кончики флюиды, сыворотки или спреи – они предупреждают их расслаивание.

Правило 7. Не забывайте и о корневой зоне – раз в неделю балуйте ее укрепляющими масками.

Правило 8. Чтоб восстановить структуру и укрепить шевелюру, пропейте курс витаминов.

Правило 9. Не расчесывайте влажные волосы – от этого они растягиваются и начинают ломаться.

Правило 10. Не проводите процедуру слишком часто – нужно, чтобы отросло хотя бы 5 см. Как правило, промежуток между окрашиваниями составляет от 3 до 6 месяцев, но, конечно, все зависит от скорости роста волос.

Совет! Если от частых покрасок пряди сильно пострадали, перейдите на те техники окрашивания, которые не требуют регулярной коррекции корневой зоны (балаяж, омбре, калифорнийское мелирование и пр.).

Смотрите также: правильный уход и восстановление здоровья волос после окрашивания (видео)

Окрашивание волос GOLDWELL на Маршала Жукова, Народного Ополчения в Хорошево-Мневниках Москвы.

GOLDWELL — безграничные возможности для вашего самовыражения!

В центре красоты Colibri Clinik парикмахеры-стилисты следят за всеми модными тенденциями в окрашивании волос. Мы работаем с профессиональной косметикой Goldwell, лидером среди фирм-производителей профессиональных красок для волос и средств по уходу за волосами.

Окрашивание волос GOLDWELL

 

GOLDWELL — это всемирно известный бренд с более чем 50-летней историей.

Профессиональная косметика Goldwell (Голдвелл) основана на японских разработках и воплощена в жизнь благодаря немецким производителям. Компания предлагает большой ассортимент средств для окрашивания, тонирования, блондирования, элюминирования, формулы которых делают процедуру намного мягче.

В центре косметологии и красоты Colibri Clinik представлена новейшая технология Goldwell для окрашивания и тонирования волос, позволяющая кардинальным образом изменить цвет своих волос, либо сделать более сочным имеющийся цвет. Технология основана на проникновении краски внутрь волоса. В ее основу легли исключительно физические процессы — притяжение положительно и отрицательно зараженных частиц. Образно говоря, волосы — это «плюс», молекулы Elumen — «минус». Они активно проникают в структуру волоса, не повреждая его защитный слой, и заполняют все поры и пустоты, образующиеся в результате воздействия различных неблагоприятных факторов, сезонных проблем, неправильного ухода.

GOLDWELL

Подробнее

Элюминирование волос Goldwell

Перелив цвета — именно то, за что любят элюминирование. Помимо основного цвета, при таком виде окрашивания подбирается оттенок перелива. К любому из выбранного из многообразия цветов можно подобрать оттенок, которым будут отливать волосы. Оттенок может быть подобен основному цвету, а может резко контрастировать с ним. Например, черные волосы могут отливать красным, рыжим или фиолетовым оттенком; белокурые — золотистым, платиновым или даже розовым; рыжие — красным, лиловым или беж. Все ограничивается только фантазией мастера и клиента.

После элюминирования волосы приобретают фантастический блеск и насыщенный цвет, а прическа зрительно увеличивается в объеме. Для тех, кто не хочет менять цвет, предусмотрен бесцветный блеск, придающий неповторимый отблеск волосам, сохраняя при этом их первоначальный цвет.

Внимание! При длине свыше 40 см дополнительная оплата 20% к стоимости услуги. Исключения: прикорневое окрашивание/мелирование.

Окрашивание

Приходя на окрашивание в салон красоты R.G.B. Lab Вы можете быть уверенными в результате. Почему нас выбирают для выполнения самых сложных работ в области колористики?

  • Коллектив сертифицированных специалистов. Это означает, что мастера прошли не только базовую подготовку в парикмахерском искусстве, но и обучались работать на косметике премиум-сегмента Paul Mitchell ®, а также постоянно повышают уровень своего мастерства как в России, так и за рубежом. Знания – основа наших побед!
  • Косметика премиум-класса Paul Mitchell ®. Широкая палитра оттенков, высокое качество материалов, уход за волосами на основе последних достижений в науке. Приоритет в использовании природных компонентов, эко-направленность бренда. Эффективный и качественный уход.
  • Принцип «простоты и открытости». Мастер при Вас работает в лаборатории, Вам виден процесс «от и до». В интерьере мы придерживаемся минимализма и монохрома, чтобы Ваше внимание было направлено на результат.
  • Air-touch, омбре, шатуш, балаяж, сомбре, калифорнийское мелирование, классическое мелирование, и многие другие из современных техник окрашивания доступны на Ваш выбор. Все техники выполняются на высоком профессиональном уровне, специалистами, прошедшими обучение и мастер-классы. Каждое из окрашиваний предварительно согласовывается по Вашим референсам (фотографиям-примерам). Мастер учитывает не только Ваши пожелания, но и исходную «базу»: состояние волос, повреждения, неровности предыдущих окрашиваний. Мы не даём пустых обещаний, кажется, так поступают профессионалы? 🙂

 

Мы следим за всеми тенденциями моды, отрабатываем и совершенствуем наши навыки. Главное кредо нашей команды: не навреди! Во главе процесса: качество и цвет, а техника окрашивания будет подобрана с учетом Ваших пожеланий и особенностей волос.

Вот что думает про окрашивание в R.G.B. Lab наш Арт-директор, международный тренер-технолог Paul Mitchell ®, — Ольга Гемберг:

«Колористика — это профессия внутри профессии. Можно быть парикмахером, но не быть колористом. Это обширная часть парикмахерского искусства. Взять один тюбик и нанести состав на волосы — не является искусством. Понимание протекания сложности химического процесса, состав волос и красителя, почему нужно взять именно этот продукт именно для этих волос, профессиональный и деликатный уход после окрашивания — это лишь малая часть того, что колорист обязан знать и уметь. А еще сочетание цвета и формы, состояние волос, идеальное знание бренда на котором работаешь, различные техники окрашивания и многое другое. Мы следим за всеми тенденциями моды, отрабатываем и совершенствуем наши навыки. Главное кредо нашей команды: не навреди! Во главе процесса: качество и цвет, а техника окрашивания будет подобрана с учетом Ваших пожеланий и особенностей волос. Тренеры компании Paul Mitchell ® в совершенстве знают, с чем они работают. От обязательных основ колористки до сложных ингредиентных составов красителей. Идеальный цвет в сочетании с великолепной стрижкой – это залог Вашего лучшего образа и настроения».

Окрашивание корней | Международная коллекция культур (везикулярных) арбускулярных микоризных грибов INVAM

При отборе проб корней для обнаружения и / или измерения количества микоризной колонизации, важно выбирать более тонкие и волокнистые корни. Старые корни или корни из растения с стержневыми или другими грубыми корнями, могут иметь микоризу, но колонизация обычно редкая и состоит только из гиф, которые чаще всего видны снаружи корни. Для растений с мочковатой корневой системой достаточно случайной выборки.Темно пигментированных корней следует избегать — использовать их означает пройти дополнительную стадия отбеливания (обычно достаточно инкубирования в 5% бытовом отбеливателе в течение 5-10 минут. но это следует проверить эмпирически).


После тщательной промывки для удаления всех частиц корни помещают в пластик. кассеты, используемые в медицине для обработки биопсийных тканей. Различные типы кассет продаются (Fischer, Ted Pella и т. д.), но лучше всего подходят для образцов корней прямоугольной формы. с 0.Отверстия 9 мм (фото справа). Кассеты с большими отверстиями приводят к побегу корней, особенно если корни разрезать на мелкие фрагменты. Слегка укладывайте корни в кассетах (не более 0,1-0,2 г) для максимальной инфильтрации растворов.


Корни очищают (удаление цитоплазматического содержимого из клеток) горячим 10% КОН. Используются разные подходы, от кассет автоклавирования по 5-10 минут. варить их в каком-нибудь контейнере на лабораторном столе. Многое зависит от количества образцов обрабатываться одновременно.Обычно мы обрабатываем только 10-20 образцов за раз. Чтобы свести к минимуму перемешивание, мы предварительно кипятили КОН в большом стакане над горелкой Бунзена. и сразу же добавлять кассеты при выключении горелки. Время инкубации варьируется при толщине и хрупкости корней, но обычно достаточно 10 минут. Старшая более толстые корни требуют более длительного времени инкубации. Поджаривание раствора — признак клирингового процесса.


Поскольку большинство гистологических красителей, используемых для этой процедуры, являются кислыми, это Очень важно, чтобы корни были подкислены.Так корни промываем (4-5 х), а затем погружаем кассеты в 2% HCl в течение 15-20 минут. Для корней из сильно щелочных почв более длительная инкубация раз рекомендуется. Если корни равномерно темные и микоризу трудно видите, тогда причиной часто является неадекватная очистка.


Та же процедура, описанная выше, для очистки корней проводится снова, только с 0,05% прямой синий или другой подходящий краситель (кислый фуксин, хлоразоловый черный E). Пятно готовится путем смешивания с водой, глицерином и молочной кислотой в пропорциях. 1: 1: 1 (об. / об. / об.).Время инкубации варьируется, но для нас лучше всего 3-4 минуты. тепличные растения. На фото справа кассеты с корнями добавляли в окрашивающий раствор, нагретый на лабораторном столе с горелкой Бунзена, с горелка отключалась, когда раствор закипал. Этот шаг можно выполнить без применение тепла, но затем инкубационный период необходимо продлить до 12 час.


Пятно сливают в другую емкость (можно использовать снова 1-2 раза после фильтрация через марлю) или выбросить в мусорный бак.Промойте кассеты с 4-5 сменами воды и хранить при температуре 4 ° C в воде. Больше контраста между грибковыми ткань и фоновые клетки растений получают после хранения образцов в воде на неделю или дольше в холодильнике (с корней вымывается лишнее пятно).


Для длительного хранения окрашенных корней мы помещаем их в стеклянные пробирки с завинчивающейся крышкой. содержащая водно-глицериновую смесь (2: 1 об. / об.) с 1-2 каплями 0,1% -ного азида натрия при 4 ° С. Пятно сохраняется в грибковой ткани более одного года.Корни можно хранить также в фиксирующих растворах (например, формалин), но только если вы хотите заключить договор аллергия, рак или другие возможные проблемы со здоровьем.


Микориза, окрашенная 0,05% кислым фуксином в качестве альтернативного красителя

Список литературы

Филлипс, Дж. М. и Д. С. Хейман. 1970. Усовершенствована процедура очистки корней и окрашивание паразитарных и везикулярно-арбускулярных микоризных грибов для быстрой оценки инфекции. Транзакции Британского микологического общества 55: 158-161. (классическая бумага)

Коске, Р. Э. и Дж. Н. Джемма. 1989. Модифицированная процедура окрашивания корней для обнаружения В.А. микоризы. Микологические исследования 92: 486-505.

МакГонигл, Т. П., М. Х. Миллер, Д. Г. Эванс, Г. Л. Фэирчайлд и Дж. А. Свон. 1990 г. Новый метод, который дает объективную оценку заселения корней везикулярно-арбускулярными микоризные грибы. Новый фитолог 15: 490-501.

Окрашивание колонизированных корней микоризных грибов (AMF) — Департамент растениеводства

Растительный материал

Эта процедура должна быть оптимизирована для соответствия конкретной ткани корня, которую вы используете, и будет зависеть от возраста, среды выращивания, общего состояния и метода фиксации (если есть) ваших корней. Для успеха этой процедуры окрашивания важно, чтобы ткань полностью очищалась КОН перед окрашиванием.

О чем следует помнить:

  • Если вначале корни хранились в фиксаторе, необходимо пару раз промыть их в водопроводной воде.
  • Старые или выращенные в поле корни будут сопротивляться очищению из-за накопления дубильных веществ и других соединений.

Процедура

  1. Поместите корни в держатели так, чтобы ваш образец поместился в нижних 50% контейнера. Обычно используемые контейнеры представляют собой сцинтилляционные флаконы и пробирки различных размеров. Помимо размера, единственное другое соображение заключается в том, что контейнер изготовлен из материала, который можно автоклавировать. Если вы обрабатываете много образцов, вы можете накрыть контейнеры плотно прилегающей сеткой, чтобы решения можно было легко заменить.Открытые крышки (с сеткой) можно приобрести для 40 мл сцинтилляционных флаконов.
  2. Добавьте 10% КОН (вес / объем) в каждый контейнер, убедившись, что образец полностью покрыт и что жидкость не заполняет более половины контейнера. Для корней, выращенных в поле, вы можете замочить ткань на ночь, не забудьте заменить ее свежим КОН перед термообработкой. Вы обнаружите, что КОН становится желтым за ночь, указывая на то, что дубильные вещества покинули вашу ткань и перешли в раствор. Ночное замачивание можно проводить до или после термообработки.Для некоторых тканей может потребоваться два периода замачивания.
  3. Термическая обработка может осуществляться кипячением на водяной бане или автоклавированием. Это часть процедуры, которая больше всего нуждается в оптимизации. Для выращиваемых в теплицах корней кукурузы 2-3-недельного возраста необходимо всего 15 минут автоклавирования (без предварительного замачивания КОН). Выращенные в поле придаточные корни кукурузы диаметром 1 см и возрастом 2-3 месяца требуют замачивания в течение ночи и 1 часа автоклавирования. Некоторые салфетки могут потребовать многократного замачивания и более часа в автоклаве.Время кипячения обычно больше, чем соответствующее время в автоклаве.

    Корни, которые были хорошо очищены, напоминают вареную рисовую лапшу. Они и полупрозрачные, и прозрачные, и белые (даже отдаленно не желтоватые!). Помните, что очистка с помощью КОН удаляет многие соединения в клеточной стенке, поэтому после этого процесса ваши корни будут мягкими и непрочными. Боковые корни могут частично или полностью разрушиться. Следует проявлять осторожность, чтобы не растворять части измельченной ткани (обычно кора головного мозга идет первой).Трудно определить, были ли корни полностью очищены без окрашивания, но исследование очищенных и неокрашенных корней под 4-кратным увеличением световой микроскопии выявит белую ткань, состоящую из клеток, окруженных тонкими серыми клеточными стенками. Кроме того, вы сможете сфокусироваться на образце.

  4. Извлеките образцы из автоклава и трижды промойте водопроводной водой. Добавьте 5% HCl и оставьте на минуту. Вылейте HCl и добавьте пятно трипанового синего. Оставьте на ночь (или дольше, тоже нормально) и исследуйте корни под микроскопом.

    Если корни очень темно-синие, они недостаточно долго очищались в КОН и необходима дальнейшая оптимизация.

    Пятно:
    1 л глицерина
    950 мл дистиллированной воды
    50 мл уксусной кислоты
    0,2 г трипанового синего

  5. Типичный метод количественной оценки колонизации корня — метод пересечения линий сетки (McGonigle et al, 1990). Этот метод был адаптирован много раз, и каждый исследователь должен подумать об оптимизации этих процедур исследования и количественной оценки для соответствия желаемому сбору данных.Ниже приведены несколько возможных подходов.

Методы обследования

Световой микроскоп

Корни можно исследовать небольшими сегментами между двумя предметными стеклами микроскопа (вариант метода «сквоша»), а количественную оценку можно провести с использованием либо окуляра, либо сетки предметной сетки, либо микрометра. У этого метода есть несколько преимуществ. Во-первых, ткань исследуется под световым микроскопом, который позволяет получить лучшее изображение, чем при использовании стереомикроскопа. Кроме того, здесь ткань легко разрушается и растягивается, что позволяет визуализировать больше грибковых структур.Одним из недостатков здесь является повышенная трата времени

Стерео (диссектирующий) прицел

Целые корни можно исследовать с помощью чашки Петри, снабженной сеткой из плексигласа. Корни помещают в посуду с водой, а поверх них кладут сетку. Исследователь перемещает тарелку возвратно-поступательным движением, чтобы исследовать все пересечения сетки. Преимущество здесь состоит в том, что можно исследовать больший объем ткани. Недостатком является то, что может быть труднее распознать или идентифицировать грибковые структуры с помощью препаровки.

Методы количественной оценки

Количественный анализ выполняется путем расчета процента колонизации вашего образца. Вы можете использовать только две категории («микоризные» и «немикоризные») или можете разделить на различные категории грибковых структур (т.е. пузырьки, арбускулы, гифы). В любом случае вам нужно будет следить за числами. Если используются две категории, вы можете отслеживать их с помощью ручных счетчиков кликов, по одному в каждой руке. Если у вас есть только один счетчик, вы можете отслеживать другую категорию в своей голове.Подсчет необходим для более чем двух категорий.

(PDF) Простая техника окрашивания синим цветом для арбускулярной микоризы и других корневых грибов

Инокулят 56 (4), No ve mb er 20 05

69

МИКОЛОГИЧЕСКИЕ НОВОСТИ

Джоан В. Беннетт, профессор клеточной медицины

и молекулярная биология в Университете Тулейна —

город, был избран в Национальную академию наук

в мае. Выборы в Национальную академию

, которая служит национальной консультативной группой по вопросам науки,

инженерии и медицины, являются одной из

высших наград, присуждаемых в науке

.Доктор Беннетт станет вторым действующим членом Академии

в Обществе,

вместе с Т.Н. Тейлор из Университета Канзаса

.

Доктор Беннет широко известна своим

вкладом в исследования, преподавание и

службой. Ее избрание в Национальную

Академия признает ее плодотворный вклад в области производства вторичных метаболитов грибами

и промышленной микробиологии

.Она является активным инструктором с обязанностями

на многих курсах, а ее выдающиеся достижения в области преподавания и консультирования

отмечены многочисленными наградами. Ее послужной список

Тулейну и профессиональным сообществам ошеломляет.

Доктор Беннетт был соредактором пяти книг и работал в качестве редактора

в двенадцати различных журналах и книжных сериях. Члены MSA могут быть лучше всего знакомы с доктором.Бен-

нетто из ее службы в качестве главного редактора MYCOLOGIA

с 2002 по 2004 год, период значительных

изменений в журнале, включая передачу права собственности на

Ботанический сад Нью-Йорка

к MSA, он-лайн публикация

и, что наиболее важно, преобразование

из бумажной в полностью электронную систему подачи, рецензирования и публикации

. ДокторБеннетт руководил всеми

этой суматохой с апломбом, и с учетом того, что все

этих изменений теперь надежно закреплены, трудно представить, как с этим справлялись

за такой короткий период времени.

Однако мы не можем утверждать, что доктор Беннетт принадлежит нам только

. Среди других должностей в

Американского общества микробиологии,

она была его президентом, и на протяжении всей своей карьеры

сыграла важную роль в представлении грибов в широком диапазоне микробиологии

, особенно на международном уровне.Она

входит в очень небольшое число грибковых биологов

, являющихся членами Национальной академии, и уверена, что

является сильным и эффективным защитником микологии. Итак,

, и мы с радостью и гордостью поздравляем Джоан с избранием

в Национальную академию.

Дэвид М. Гейзер

[email protected]

свет помогает в наблюдениях в этом процессе, хотя

не является существенным.

6. Подкислите корни 1% -ной соляной кислотой или другой кислотой. Видно, что действие кислоты

работает, потому что корни

сразу же светлеют. Переместите корни в подкисленные чернила или

добавьте чернила пипеткой непосредственно к подкисленным корням.

Корни можно исследовать под микроскопом примерно через

30 минут, хотя окрашивание обычно улучшается в течение более длительного периода

. Лучше оставить их минимум на 4 часа, а лучше

на ночь.Их можно хранить в подкисленном глицерине + чернила в-

определенно. Рекомендуется обесцвечивание в течение нескольких часов в подкисленном глицерине

, что приводит к улучшенной прозрачности и контрастности

, но если кто-то спешит, окрашенные фрагменты корня

можно немедленно перенести в подходящую среду для закрепления на микропрепарате.

предметных стекла для наблюдения. Лакто-глицерин-

поливинилового спирта (PVLG) (Omar, Boland & Heather 1979) производит полупостоянную основу

(последние много лет) или подкисленный глицерин

, если нет необходимости в дальнейшем срок

консервация образцов.

Этот метод еще больше сокращает использование неприятных химикатов

по сравнению с техникой чернил и уксуса —

nique. Тем не менее, все рекомендации по охране здоровья и безопасности

и правила должны соблюдаться при использовании кислот, разбавленных или других

, или горячих щелочных растворов.

Ссылки: Омар, М. Б., Болланд, Л. и Хизер, В. А.

(1979). Бюллетень Британского микологического общества 13, 31-

32.; Vierheilig, H., Coughlan, A.P., Wyss, U. & Piché, Y.

(1998). Прикладная микробиология окружающей среды 64, 5004-5007.

Кристофер Уокер

Королевский ботанический сад, Эдинбург

[email protected]

Джоан Беннетт избран членом Национальной академии наук

Беннет

Технология с использованием микроволн для очистки и окрашивания арбускулярных микоризалов грибки в корнях

  • Bajwa R, Mahmood S, Naz JZ, Nasim G (1996) Быстрый метод очистки и окрашивания корней VA Mycorrhizal.Sci Khyber (Пакистан) 9: 35–41

    Google Scholar

  • Баккерен G, Kronstad JW, Lévesque CA (2000) Сравнение отпечатков пальцев AFLP и последовательностей ITS в качестве филогенетических маркеров у Ustilaginomycetes. Mycologia 92: 510–521

    Статья CAS Google Scholar

  • Bevege DI (1968) Быстрый метод очистки от дубильных веществ и окрашивания неповрежденных корней для обнаружения микоризы, вызываемой Endogone spp.и некоторые записи об инфекции австралийских растений. Trans Br Mycol Soc 51: 808–810

    Статья Google Scholar

  • Brundrett MC, Piché Y, Peterson RL (1984) Новый метод наблюдения за морфологией везикулярно-арбускулярной микоризы. Can J Bot 62: 2128–2134

    Статья Google Scholar

  • Феррис Р.С. (1984) Влияние обработки в микроволновой печи на микроорганизмы в почве.Фитопатология 74: 121–126

    Статья Google Scholar

  • Gange AC, Bower E, Stagg PG, Aplin DM, Gillam AE, Bracken M (1999) Сравнение методов визуализации для регистрации колонизации арбускулярной микоризы. New Phytol 142: 123–132

    Артикул Google Scholar

  • Grace C, Stribley DP (1991) Более безопасная процедура рутинного окрашивания везикулярно-арбускулярных микоризных грибов.Mycol Res 95: 1160–1162

    Статья Google Scholar

  • Hafajee ZAM, Leong ASY (2004) Сверхбыстрая микроволновая обработка тканей с модифицированным протоколом, включающим микроволновую фиксацию. Патология 36: 325–329

    PubMed Статья Google Scholar

  • Hamel C, Fyles H, Smith DL (1990) Измерение развития эндомикоризного мицелия с использованием трех различных витальных красителей.New Phytol 115: 297–302

    Артикул Google Scholar

  • Ishii S, Loynachan TE (2004) Быстрые и надежные методы экстракции ДНК из корней микориз, окрашенных трипановым синим: сравнение двух методов. Микориза 14: 271–275

    PubMed Статья CAS Google Scholar

  • Кок Л.П., Бун М.Э. (1992) Поваренная книга в микроволновой печи для микроскопистов: искусство и наука визуализации.Coulomb Press Leyden, Нидерланды

    Google Scholar

  • Корманик П.П., МакГроу А.С. (1982) Количественная оценка везикулярно-арбускулярной микоризы в корнях растений. В: Schenck NC (ed) Методы и принципы исследования микориз. Американское фитопатологическое общество, Сент-Пол, стр. 37–45

    Google Scholar

  • Koske RE, Gemma JN (1989) Модифицированная процедура окрашивания корней для обнаружения микоризы VA.Mycol Res 92: 486–488

    Статья Google Scholar

  • Линфорд М.Б. (1942) Методы наблюдения за почвенной флорой и фауной, связанной с корнями. Soil Sci 53: 93–103

    Статья Google Scholar

  • Mizuhira V, Hasegawa H (1996) Метод микроволновой фиксации для цитохимии. Eur J Morphol 34: 385–391

    PubMed Статья CAS Google Scholar

  • Омар М.Б., Болланд Л., Хизер В.А. (1979) Постоянная среда для размножения грибов.Bull Brit Mycol Soc 13: 31–32

    Статья Google Scholar

  • Филипс Дж. М., Хейман Д. С. (1970) Улучшенные процедуры очистки корней и окрашивания паразитарных и везикулярно-арбускулярных микоризных грибов для быстрой оценки инфекции. Trans Br Mycol Soc 55: 158–161

    Статья Google Scholar

  • Pitet M, Camprubí A, Calvet C, Estaún V (2009) Модифицированный метод окрашивания арбускулярной микоризы, совместимый с молекулярными зондами.Микориза 19: 125–131

    PubMed Статья CAS Google Scholar

  • Robideau GP, De Cock AWAM, Coffey MD et al (2011) Штрих-кодирование ДНК оомицетов с помощью субъединицы I оксидазы цитохрома c и внутреннего транскрибируемого спейсера. Mol Ecol Resour 11: 1002–1011

    PubMed Статья CAS Google Scholar

  • Шаффер Г.Ф., Петерсон Р.Л. (1993) Модификации методов очистки, используемых в сочетании с витальным окрашиванием корней, колонизированных везикулярно-арбускулярными микоризными грибами.Микориза 4: 29–35

    Статья. Google Scholar

  • Schichnes D, Nemson J, Sohlberg L, Ruzin SE (1998) Микроволновые протоколы для микротехники парафина и локализации in situ в растениях. Microsc Microanal 4: 491–496

    PubMed Статья CAS Google Scholar

  • Шиптон В.А., Браун Дж.Ф. (1962) Метод очистки и окрашивания всего листа для демонстрации взаимосвязи между хозяином и патогеном стеблевой ржавчины пшеницы.Фитопатология 52: 1313

    Google Scholar

  • Sokolski S, Dalpé Y, Séguin S, Khasa D, Lévesque CA, Piché Y (2010) Конспецифичность DAOM 197198, модельного арбускулярного микоризного гриба, с Glomus irregulare : молекулярные доказательства с тремя генами, кодирующими белок. Ботаника 88: 829–838

    Статья CAS Google Scholar

  • Tarkalson DD, Pendleton RL, Jolley VD, Robbins CW, Terry RE (1998) Подготовка и окрашивание микоризных структур в сухих бобах, сладкой кукурузе и пшенице с использованием блочного варочного котла.Коммунальный почвенный завод 29: 2263–2268

    Статья CAS Google Scholar

  • van Tuinen D, Jacquot E, Zhao B, Gollotte A, Gianinazzi-Pearson V (1998) Характеристика профилей корневой колонизации сообществом арбускулярных микоризных грибов в микрокосме с использованием вложенной ПЦР, нацеленной на 25S рДНК. Мол Экол 7: 879–887

    PubMed Статья Google Scholar

  • Vierheilig H, Coughlan AP, Wyss U, Piché Y (1998) Чернила и уксус, простой метод окрашивания для арбускулярно-микоризных грибов.Appl Environ Microbiol 64: 5004–5007

    PubMed CAS Google Scholar

  • Vierheillig H, Schweiger P, Brundrett M (2005) Обзор методов обнаружения и наблюдения за грибами арбускулярной микоризы в корнях. Physiol Plant 125: 393–404

    Google Scholar

  • Wu TH (2008) J. Экологические перспективы микроволновых приложений как лечебных альтернатив: обзор.J Опасные токсичные радиоактивные отходы 12: 102–115

    Статья CAS Google Scholar

  • Процедура быстрого окрашивания арбускул живых арбускулярных микориз с использованием нейтрального красного в качестве ацидотропного красителя

  • Agerer R 1991 Характеристика эктомикоризы. Методы Microbiol. 23, 25–73.

    Google Scholar

  • Александр Т., Мейер Р., Тот Р. и Вебер Х. С. 1988 Динамика развития и дегенерации арбускул в микоризах Triticum aestivum L.и Avena sativa L. со ссылкой на Zea mays L. New Phytol. 110, 363–370.

    Артикул Google Scholar

  • Александр Т., Тот Р., Мейер Р. и Вебер Х. С. 1989 Динамика развития и дегенерации арбускул у лука, фасоли и томатов по отношению к везикулярно-арбускулярной микоризе в травах. Caqn. J. Bot. 67, 2505–2513.

    Google Scholar

  • Anderson R G W1989 Обнаружение кислотных компартментов после заливки.Методы Cell Biol. 31, 463–472.

    PubMed CAS Google Scholar

  • Боллер Т. и Вимкен А. 1986 Динамика вакуолярной компартментации. Аня. Rev. Pl. Physiol. 37, 137–164.

    CAS Статья Google Scholar

  • Брундретт М.К., Пиче Й. и Петерсон Р.Л. 1984 Новый метод наблюдения за морфологией везикулярно-арбускулярной микоризы. Может. J. Bot.62, 2128–2134.

    Google Scholar

  • Карлинг Д. Э. и Браун М. Ф. 1982 Анатомия и физиология везикулярно-арбускулярных и немикоризных корней. Фитопатология 72, 1108–1114.

    Google Scholar

  • Conn H J 1977 Биологические пятна Х. Дж. Конна. Справочник по природе и использованию красителей, используемых в биологической лаборатории. Waverly Press, Балтимор, Мэриленд, США.692 с.

    Google Scholar

  • Джанинацци-Пирсон В. 1996 Ответы растительных клеток на арбускулярные микоризные грибы: добраться до корней симбиоза. Растительная клетка 8, 1871–1883 ​​гг.

    PubMed Статья Google Scholar

  • Джанинацци-Пирсон В., Смит С. Е., Джанинацци С. и Смит Ф. А. 1991 Ферментативные исследования метаболизма везикулярной арбускулярной микоризы.V. Является ли ГК-АТФаза компонентом активности ферментов, гидролизующих АТФ, на границах раздела растительных грибов? Новый Фитол. 117, 61–74.

    CAS Статья Google Scholar

  • Göke G 1985 Methoden der Interferenzmikroskopie. 4. Дифференциаллер-интерференцконтраст (ДИК). Микрокосмос 74, 274–294.

    Google Scholar

  • Гупта Х. С. и Де Д. Н. 1988 Индуцированное акридиновым оранжевым вакуумное поглощение цитоплазматических органелл в растительных клетках: ультраструктурное исследование.J. Pl. Physiol. 132, 254–256.

    CAS Google Scholar

  • Guttenberger M 2000 Арбускулы везикулярно-арбускулярных микоризных грибов обитают в кислой среде корней растений. Planta, в печати.

  • Холли Д. и Петерсон Р. Л. 1979 Развитие пузырно-мышечной микоризы в корнях бобов. Может. J. Bot. 57, 1960–1978.

    Google Scholar

  • Исида М., Айхара М. С., Аллен Р. Д. и Фок А. К. 1997 Подкисление молодых фагосом Paramecium опосредуется протонными насосами, происходящими из ацидосом.Protoplasma 196, 12–20.

    Артикул Google Scholar

  • Lulai E. C. и Morgan W. C. 1992 Гистохимическое исследование перидермы картофеля нейтральным красным: чувствительный цитофлуорохром для гидрофобного домена суберина. Biotec. Histochem. 67, 185–195.

    CAS Google Scholar

  • Миллнер П.Д. и Китт Д.Г. 1992 Белтсвиллский метод беспочвенного получения везикулярно-арбускулярных микоризных грибов.Микориза 2, 9–15.

    Артикул Google Scholar

  • Филипс Дж. М. и Хейман Д. С. 1970 Улучшенные процедуры очистки корней и окрашивания паразитарных и везикулярно-арбускулярных микоризных грибов для быстрой оценки инфекции. Пер. br. mycol. Soc. 55, 158–161.

    Артикул Google Scholar

  • Шаффер Г. Ф. и Петерсон Р. Л. 1993 Модификации методов очистки, используемых в сочетании с витальным окрашиванием корней, колонизированных везикулярно-арбускулярными микоризными грибами.Микориза 4, 29–35.

    Артикул Google Scholar

  • Schüß ler A, Schnepf E, Mollenhauer D и Kluge M 1995 Грибковые пузыри эндоцианоза Geosiphon pyriforme , гриб, связанный с Glomus : проницаемость клеточной стенки указывает на предельный радиус пор всего 0,5 нм. Protoplasma 185, 131–139.

    Артикул Google Scholar

  • Шеппард К. Дж. Р. и Торок П. 1997 Влияние показателя преломления образца на конфокальную визуализацию.J. Microscopy 185, 366–374.

    Артикул Google Scholar

  • Смит Ф. А. и Смит С. Е. 1996 Мутуализм и паразитизм: биоразнообразие в функциях и структуре в «арбускулярном» (VA) микоризном симбиозе. Adv. бот. Res. 22, 1–43.

    Артикул Google Scholar

  • Смит Ф. А., Смит С. Е. 1997 Структурное разнообразие в (везикулярных) -арбускулярных микоризных симбиозах.Новый Фитол. 137, 373–388.

    Артикул Google Scholar

  • Смит С. Э. и Диксон С. 1991 Количественная оценка активной пузырно-мышечной микоризной инфекции с использованием анализа изображений и других методов. Aust. J. Pl. Physiol. 18, 637–648.

    Артикул Google Scholar

  • Соуза К., Саэ Мело Т., Гез М., Голлье Дж. М., Мазьер Дж. С. и Сантус Р. 1996 Полярность растворителя и влияние pH на спектроскопические свойства нейтрального красного: применение для исследования лизосомного микросреды в живых клетках.Photochem. Photobiol. 63, 601–607.

    PubMed CAS Google Scholar

  • Stadelmann E J и Kinzel H 1972 Витальное окрашивание растительных клеток. Методы Cell Biol. 5, 325–372.

    Артикул Google Scholar

  • Стивенс Т. Х. 1992 Структура и функция ВАТФазы грибов. J. exp. Биол. 172, 47–55.

    PubMed CAS Google Scholar

  • Таиз Л 1992 Растительная вакуоль.J. exp. Биол. 172, 113–122.

    PubMed CAS Google Scholar

  • Тот Р., Миллер Р. М. 1984 Динамика развития и дегенерации арбускул у микоризы Zea mays . Являюсь. J. Bot. 71, 449–460.

    Артикул Google Scholar

  • Окрашивание нематод в корнях растений

    Окрашивание нематод в корнях растений

    Окрашивание нематод в тканях растений

    Ред.30.10.2019

    Натрий-гипохлорит-кислотно-фушиновый метод (Byrd et al., 1983).

    Очистка корневой ткани

    1. Вымойте корни водой и поместите их в стакан на 150 мл. Большой корень системы можно разрезать на секции для окрашивания.

    2. Добавьте 50 мл водопроводной воды и необходимое количество хлорного отбеливателя (5,25% NaOCl), чтобы очистить ткань корня. Замочите корни на 4 минуты в NaOCl. раствор и время от времени встряхивайте.Предлагаемые рекомендации по количеству отбеливателя необходимо добавить:

    а) 10 мл 5,25% NaOCl для молодых корней.
    б) 20 мл 5,25% NaOCl для корней умеренного возраст.
    c) 30 мл 5,25% NaOCl для пожилых людей и старше одревесневшие корни.

    Окрашивание корней нематод

    3. Промойте корни проточной водой из-под крана примерно 45 секунд, а затем погрузите их в воду на 15 минут, чтобы удалить остатки NaOCl, которые могут влияют на окрашивание кислотным фушином.

    4. Слейте воду и перенесите корни в стеклянный стакан с 30-50 мл раствора. водопроводная вода.

    5. Добавьте 1 мл основного раствора кислотно-фушинового красителя в воду и кипятите в течение около 30 секунд на плите или в микроволновой печи. Подготовить запас кислотно-фушиновый раствор, растворите 3,5 г кислого фушина в 250 мл уксусной кислоты и 750 мл. мл дистиллированной воды.

    6. Охладите раствор до комнатной температуры, слейте пятно и промойте. корни в проточной водопроводной воде.

    Уничтожение корней

    7.Обесцвечивайте корни кипячением в 20-30 мл глицерина, подкисленного небольшим количеством капли 5 N HCl.

    8. Распределите корни в небольшом количестве глицерина на крышке чашки Петри. осторожно прижмите крышку дном чашки Петри и наблюдайте под рассекающий микроскоп. Вместо Петри можно использовать пару стеклянных пластинок. блюда. Корни можно хранить в подкисленном глицерине с небольшой потерей контраста. между нематодами и корнями.

    Артикул:

    Берд, Д.W., Jr., T. Kirkpatrick и K.R. Баркер. 1983. Усовершенствованная техника. для очистки и окрашивания тканей растений для обнаружения нематод. Журнал нематологии 14: 142-143.

    Вернуться в меню методов

    Протокол для быстрой очистки и окрашивания фиксированных семяпочек Arabidopsis для улучшения изображений с помощью конфокальной лазерной сканирующей микроскопии | Методы растений

  • 1.

    Чаудхари А., Гао Дж., Шнайц К. Генетический контроль развития семяпочек. Справочный модуль по наукам о жизни. Амстердам: Эльзевир; 2018.https://doi.org/10.1016/b978-0-12-809633-8.20737-1.

    Глава

    Google Scholar

  • 2.

    Гассер К.С., Скиннер Диджей. Развитие и эволюция уникальных семяпочек цветковых растений. Curr Top Dev Biol. 2019. https://doi.org/10.1016/bs.ctdb.2018.10.007.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 3.

    Накадзима К. Будь моим ребенком: формирование паттерна в отношении зародышевых клеток растений.Curr Opin Plant Biol. 2017; 41: 110–5. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2017.11.002.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 4.

    Кучинотта М., Коломбо Л., Роиг-Вилланова И. Развитие яйцеклетки, новая модель формирования боковых органов. Фронтальный завод им. 2014; 5: 117. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00117.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 5.

    Ван Ц.-Дж., Цзэн Ц-С. Последние достижения в понимании инициации мейоза и апомиктического пути у растений. Фронтальный завод им. 2014; 5: 497. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00497.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 6.

    Schneitz K, Hülskamp M, Pruitt RE. Развитие семяпочки дикого типа у Arabidopsis thaliana : исследование очищенной цельной ткани под световым микроскопом. Плант Дж. 1995; 7: 731–49.https://doi.org/10.1046/j.1365-313X.1995.07050731.x.

    Артикул Google Scholar

  • 7.

    Робинсон-Бирс К., Прюитт Р.Э., Гассер К.С. Развитие семяпочек у Arabidopsis дикого типа и двух мутантов с женской стерильностью. Растительная клетка. 1992; 4: 1237–49. https://doi.org/10.1105/tpc.4.10.1237.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 8.

    Исау К. Анатомия семенных растений.2-е изд. Нью-Йорк: Уайли; 1977.

    Google Scholar

  • 9.

    Modrusan Z, Reiser L, Feldmann KA, Fischer RL, Haughn GW. Гомеотическая трансформация семяпочек в структуры, похожие на плодолистики у Arabidopsis. Растительная клетка. 1994; 6: 333–49. https://doi.org/10.1105/tpc.6.3.333.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 10.

    Schneitz K, Hülskamp M, Kopczak SD, Pruitt RE.Вскрытие онтогенеза полового органа: генетический анализ развития семяпочки Arabidopsis thaliana . Разработка. 1997; 124: 1367–76.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 11.

    Энугутти Б., Шнайц К. Микроскопический анализ яйцеклеток Arabidopsis. Методы Мол биол. 2014; 1110: 253–61. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-9408-9_12.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 12.

    Берлет Т., Юргенс Г. Роль гена monopteros в организации области базального тела эмбриона Arabidopsis. Разработка. 1993. 118: 575–87.

    Google Scholar

  • 13.

    Grossniklaus U, Vielle-Calzada JP, Hoeppner MA, Gagliano WB. Материнский контроль эмбриогенеза с помощью MEDEA, гена группы поликомб у Arabidopsis. Наука. 1998. 280: 446–50.

    CAS Статья Google Scholar

  • 14.

    Drews GN, Lee D, Christensen CA. Генетический анализ развития и функции женских гаметофитов. Растительная клетка. 1998. 10: 5–17.

    CAS Статья Google Scholar

  • 15.

    Управляющий депутат, Clark SE, Meyerowitz EM. Конфокальная микроскопия верхушки побега. Методы Cell Biol. 1995; 49: 217–29.

    CAS Статья Google Scholar

  • 16.

    Truernit E, Bauby H, Dubreucq B, Grandjean O, Runions J, Barthélémy J, et al.Полное изображение с высоким разрешением трехмерной организации ткани и экспрессии генов позволяет изучать развитие и структуру флоэмы у Arabidopsis. Растительная клетка. 2008. 20: 1494–503. https://doi.org/10.1105/tpc.107.056069.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 17.

    Musielak TJ, Schenkel L, Kolb M, Henschen A, Bayer M. Простой и универсальный протокол окрашивания клеточной стенки для изучения воспроизводства растений.Завод Репрод. 2015; 28: 161–9. https://doi.org/10.1007/s00497-015-0267-1.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 18.

    Ли К., Эйвондо Дж., Моррисон Х., Блот Л., Старк М., Шарп Дж. И др. Визуализация развития растений и экспрессии генов в трех измерениях с помощью оптической проекционной томографии. Растительная клетка. 2006; 18: 2145–56. https://doi.org/10.1105/tpc.106.043042.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 19.

    Medzihradszky A, Schneitz K, Lohmann JU. Обнаружение паттернов экспрессии мРНК с помощью нерадиоактивной гибридизации in situ на гистологических срезах ткани цветка. Методы Мол биол. 2014; 1110: 275–93. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-9408-9_14.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 20.

    Блекманн А., Дрессельхаус Т. Флуоресцентная цельная РНК гибридизация in situ (F-WISH) в зародышевых клетках растений и оплодотворенной яйцеклетке.Методы. 2016; 98: 66–73. https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2015.10.019.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 21.

    Pillot M, Baroux C, Vazquez MA, Autran D, Leblanc O, Vielle-Calzada JP, et al. Эмбрион и эндосперм наследуют различные состояния хроматина и транскрипции от женских гамет у Arabidopsis. Растительная клетка. 2010; 22: 307–20. https://doi.org/10.1105/tpc.109.071647.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 22.

    León-Martínez G, Demesa-Arévalo E, Vielle-Calzada J-P. Иммунолокализация для изучения белков ARGONAUTE в развивающихся семязачатках brassicaceae. Методы Мол биол. 2019; 1932: 335–45. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9042-9_24.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 23.

    Хонг Л., Дюмон М., Чжу М., Цугава С., Ли Си-Б, Баудауд А. и др. Неоднородность и устойчивость в морфогенезе растений: от клеток к органам. Annu Rev Plant Biol.2018; 69: 469–95. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-042817-040517.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 24.

    Kierzkowski D, Routier-Kierzkowska A-L. Клеточная основа роста растений: геометрия имеет значение. Curr Opin Plant Biol. 2019; 47: 56–63. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2018.09.008.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 25.

    Сапала А., Рунионс А., Смит Р.С.Механика, геометрия и генетика регуляции формы эпидермальных клеток: разные части одной головоломки. Curr Opin Plant Biol. 2019; 47: 1–8. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2018.07.017.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 26.

    Джексон MDB, Duran-Nebreda S, Kierzkowski D, Strauss S, Xu H, Landrein B, et al. Глобальный топологический порядок возникает благодаря локальному механическому контролю клеточных делений в апикальной меристеме побегов арабидопсиса.Cell Syst. 2019; 8: 53.e3–65.e3. https://doi.org/10.1016/j.cels.2018.12.009.

    CAS Статья Google Scholar

  • 27.

    Grossmann G, Krebs M, Maizel A, Stahl Y, Vermeer JEM, Ott T. Зеленый свет для количественной визуализации живых клеток растений. J Cell Sci. 2018. https://doi.org/10.1242/jcs.209270.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 28.

    Shaw SL, Ehrhardt DW.Меньше, быстрее, ярче: достижения в области оптического изображения живых клеток растений. Annu Rev Plant Biol. 2013; 64: 351–75. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-042110-103843.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 29.

    Майзель А., фон Вангенхайм Д., Федеричи Ф., Хазелофф Дж., Штельцер EHK. Получение изображений в реальном времени с высоким разрешением роста растений в условиях, близких к физиологическим, с использованием световой флуоресцентной микроскопии Завод Дж.2011; 68: 377–85. https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2011.04692.x.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 30.

    фон Вангенхайм Д., Фангерау Дж., Шмитц А., Смит Р.С., Лейтте Х., Стельцер Э.Х.К. и др. Правила и самоорганизующиеся свойства структур постэмбрионального деления клеток органов растений. Curr Biol. 2016; 26: 439–49. https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.12.047.

    CAS Статья Google Scholar

  • 31.

    Hamant O, Heisler MG, Jönsson H, Krupinski P, Uyttewaal M, Bokov P, et al. Формирование паттернов развития с помощью механических сигналов у Arabidopsis. Наука. 2008. 322: 1650–5. https://doi.org/10.1126/science.1165594.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 32.

    Kierzkowski D, Nakayama N, Routier-Kierzkowska A-L, Weber A, Bayer E, Schorderet M, et al. Эластичные домены регулируют рост и органогенез в апикальной меристеме побегов растений.Наука. 2012; 335: 1096–9. https://doi.org/10.1126/science.1213100.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 33.

    Reddy GV, Meyerowitz EM. Гомеостаз стволовых клеток и динамика роста могут быть разделены на верхушке побега Arabidopsis. Наука. 2005; 310: 663–7. https://doi.org/10.1126/science.1116261.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 34.

    Эрвье Н., Дюмон М., Сапала А., Рутье-Кежковска А. Л., Кежковски Д., Рёдер А. Х. К. и др.Механическая обратная связь ограничивает рост и форму чашелистиков у арабидопсиса. Curr Biol. 2016. https://doi.org/10.1016/j.cub.2016.03.004.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 35.

    Roeder AHK, Chickarmane V, Cunha A, Obara B, Manjunath BS, Meyerowitz EM. Изменчивость в контроле клеточного деления лежит в основе формирования эпидермального паттерна чашелистника у Arabidopsis thaliana . PLoS Biol. 2010; 8: e1000367. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1000367.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 36.

    Hong L, Dumond M, Tsugawa S, Sapala A, Routier-Kierzkowska A.L, Zhou Y, et al. Переменный рост клеток дает воспроизводимое развитие органов за счет пространственно-временного усреднения. Dev Cell. 2016; 38: 15–32. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2016.06.016.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 37.

    Meyer HM, Teles J, Formosa-Jordan P, Refahi Y, San-Bento R, Ingram G и др. Колебания фактора транскрипции ATML1 генерируют паттерн гигантских клеток чашелистника Arabidopsis. Элиф. 2017. https://doi.org/10.7554/elife.19131.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 38.

    Хазелофф Дж. Старые ботанические методы для новых микроскопов. Биотехнологии. 2003; 34: 1174–8, 1180, 1182. https://doi.org/10.2144 / 03346bi01.

    CAS Статья Google Scholar

  • 39.

    Lora J, Herrero M, Tucker MR, Hormaza JI. Переход от соматической идентичности к зародышевой линии демонстрирует консервативные и специализированные особенности во время эволюции покрытосеменных. Новый Фитол. 2017; 216: 495–509. https://doi.org/10.1111/nph.14330.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 40.

    Bassel GW, Stamm P, Mosca G, Barbier de Reuille P, Gibbs DJ, Winter R, et al.Механические ограничения, налагаемые трехмерной геометрией и расположением клеток, модулируют модели роста эмбриона Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA. 2014; 111: 8685–90. https://doi.org/10.1073/pnas.1404616111.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 41.

    Палмер В.М., Мартин А.П., Флинн Дж.Р., Рид С.Л., Уайт Р.Г., Фербанк Р.Т. и др. PEA-CLARITY: трехмерная молекулярная визуализация органов целого растения. Научный доклад 2015; 5: 13492. https://doi.org/10.1038 / srep13492.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 42.

    Хасэгава Дж., Сакамото Ю., Накагами С., Аида М., Сава С., Мацунага С. Трехмерное изображение органов растений с использованием простой и быстрой техники прозрачности. Physiol растительной клетки. 2016; 57: 462–72. https://doi.org/10.1093/pcp/pcw027.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 43.

    Musielak TJ, Slane D, Liebig C, Bayer M. Универсальный протокол оптической очистки для глубокой визуализации тканей флуоресцентных белков в Arabidopsis thaliana . PLoS ONE. 2016; 11: e0161107. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161107.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 44.

    Kurihara D, Mizuta Y, Sato Y, Higashiyama T. ClearSee: реагент для быстрой оптической очистки для флуоресцентной визуализации всего растения.Разработка. 2015; 142: 4168–79. https://doi.org/10.1242/dev.127613.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 45.

    Тиммерс ACJ. Световая микроскопия всех органов растений. J Microsc. 2016; 263: 165–70. https://doi.org/10.1111/jmi.12394.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 46.

    Урсаче Р., Андерсен Т.Г., Мархави П., Гелднер Н.Протокол комбинирования флуоресцентных белков с гистологическими красителями для различных компонентов клеточной стенки. Плант Ж. 2018; 93: 399–412. https://doi.org/10.1111/tpj.13784.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 47.

    Barbier de Reuille P, Routier-Kierzkowska A-L, Kierzkowski D, Bassel GW, Schüpbach T., Tauriello G, et al. MorphoGraphX: платформа для количественной оценки морфогенеза в 4D. Элиф. 2015; 4: 05864. https://doi.org/10.7554 / elife.05864.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 48.

    Энугутти Б., Кирхелле С., Эльшнер М., Торрес Руис Р.А., Шлибнер И., Лейстер Д. и др. Регуляция планарного роста протеинкиназой Arabidopsis AGC UNICORN. Proc Natl Acad Sci USA. 2012; 109: 15060–5. https://doi.org/10.1073/pnas.1205089109.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 49.

    Scholz S, Pleßmann J, Enugutti B, Hüttl R, Wassmer K, Schneitz K.Протеинкиназа AGC UNICORN контролирует планарный рост, ослабляя PDK1 в Arabidopsis thaliana . PLoS Genet. 2019; 15: e1007927. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1007927.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 50.

    Zhang G, Gurtu V, Kain SR. Усиленный зеленый флуоресцентный белок позволяет чувствительно определять перенос генов в клетках млекопитающих. Biochem Biophys Res Commun. 1996; 227: 707–11.https://doi.org/10.1006/bbrc.1996.1573.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 51.

    Катлер С.Р., Эрхардт Д.В., Гриффитс Дж.С., Сомервилль, CR. Случайные слияния GFP: кДНК позволяют визуализировать субклеточные структуры в клетках Arabidopsis с высокой частотой. Proc Natl Acad Sci USA. 2000; 97: 3718–23. https://doi.org/10.1073/pnas.97.7.3718.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 52.

    Поганка М., Сюй Дж., Мёбиус В., Уэда Т., Накано А., Геузе Х. Дж. И др. Эндоцитоз стеролов Arabidopsis включает опосредованный актином перенос через ARA6-положительные ранние эндосомы. Curr Biol. 2003. 13: 1378–87. https://doi.org/10.1016/S0960-9822(03)00538-4.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 53.

    Geldner N, Dénervaud-Tendon V, Hyman DL, Mayer U, Stierhof Y-D, Chory J. Rapid, комбинаторный анализ мембранных компартментов у интактных растений с помощью набора многоцветных маркеров.Плант Дж. 2009; 59: 169–78. https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2009.03851.x.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 54.

    Vaddepalli P, Fulton L, Batoux M, Yadav RK, Schneitz K. Структурно-функциональный анализ STRUBBELIG, атипичной рецептороподобной киназы Arabidopsis, участвующей в морфогенезе тканей. PLoS ONE. 2011; 6: e19730. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0019730.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 55.

    Шевалье Д., Бату М., Фултон Л., Пфистер К., Ядав Р.К., Шелленберг М. и др. STRUBBELIG определяет опосредованный рецепторной киназой сигнальный путь, регулирующий развитие органов у Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA. 2005. 102: 9074–9. https://doi.org/10.1073/pnas.0503526102.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 56.

    Харрис К., Крабб Д., Янг И.М., Уивер Х., Гиллиган Калифорния, Оттен В. и др. Визуализация грибов in situ в шлифах почвы: проблемы с кристаллизацией флуорохрома FB 28 (Calcofluor M2R) и улучшенное окрашивание с помощью SCRI Renaissance 2200.Mycol Res. 2002; 106: 293–7. https://doi.org/10.1017/S0953756202005749.

    CAS Статья Google Scholar

  • 57.

    Hoch HC, Galvani CD, Szarowski DH, Turner JN. Два новых флуоресцентных красителя, применимых для визуализации клеточных стенок грибов. Mycologia. 2005; 97: 580–8. https://doi.org/10.1080/15572536.2006.11832788.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 58.

    Уоллес И.С., Андерсон Коннектикут. Низкомолекулярные зонды для визуализации полисахаридов клеточной стенки растений. Фронтальный завод им. 2012; 3: 89. https://doi.org/10.3389/fpls.2012.00089.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 59.

    Мэнсфилд С.Г., Бриарти Л.Г., Эрни С. Ранний эмбриогенез Arabidopsis thaliana. I. Зрелый зародышевый мешок. Может J Bot. 1991; 69: 447–60.

    Артикул Google Scholar

  • 60.

    Webb MC, Gunning BES. Развитие зародышевого мешка Arabidopsis thaliana . Половое растение Reprod. 1990; 3: 244–56.

    Артикул Google Scholar

  • 61.

    Bink K, Walch A, Feuchtinger A, Eisenmann H, Hutzler P, Höfler H, et al. TO-PRO-3 — это оптимальный флуоресцентный краситель для окрашивания ядер в двухцветном FISH на парафиновых срезах. Histochem Cell Biol. 2001; 115: 292–9.

    Google Scholar

  • 62.

    Van Hooijdonk CA, Glade CP, Van Erp PE. Иодид TO-PRO-3: новое окрашивание ДНК, возбуждаемое гелий-неоновым лазером, в качестве альтернативы йодиду пропидия в многопараметрической проточной цитометрии. Цитометрия. 1994; 17: 185–9. https://doi.org/10.1002/cyto.9

    212.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 63.

    Florijn RJ, Slats J, Tanke HJ, Raap AK. Анализ антибликовых реагентов для флуоресцентной микроскопии. Цитометрия. 1995; 19: 177–82. https: // doi.org / 10.1002 / cyto.9

    213.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 64.

    Warner CA, Biedrzycki ML, Jacobs SS, Wisser RJ, Caplan JL, Sherrier DJ. Метод оптической очистки тканей растений, позволяющий получать глубокие изображения и совместимый с флуоресцентной микроскопией. Plant Physiol. 2014; 166: 1684–7. https://doi.org/10.1104/pp.114.244673.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 65.

    Littlejohn GR, Gouveia JD, Edner C, Smirnoff N, Love J. Перфтордекалин повышает разрешение конфокальной микроскопии in vivo мезофилла Arabidopsis thaliana . Новый Фитол. 2010; 186: 1018–25. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03244.x.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 66.

    Gausman HW, Allen WA, Escobar DE. Показатель преломления стенок растительных клеток. Appl Opt. 1974; 13: 109. https://doi.org/10.1364 / АО.13.000109.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 67.

    Фальк Т., Май Д., Бенш Р., Чичек О, Абдулкадир А., Марракчи Ю. и др. U-Net: глубокое обучение для подсчета, обнаружения и морфометрии клеток. Нат методы. 2019; 16: 67–70. https://doi.org/10.1038/s41592-018-0261-2.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 68.

    Sommer C, Straehle C, Kothe U, Hamprecht FA.Ilastik: интерактивный инструментарий для обучения и сегментации. Нью-Йорк: IEEE; 2011. с. 230–3. https://doi.org/10.1109/isbi.2011.5872394.

    Забронировать Google Scholar

  • 69.

    Фултон Л., Бату М., Ваддепалли П., Ядав Р.К., Буш В., Андерсен С.У. и др. DETORQUEO, QUIRKY и ZERZAUST представляют собой новые компоненты, участвующие в развитии органов, опосредованных рецептороподобной киназой STRUBBELIG в Arabidopsis thaliana . PLoS Genet. 2009; 5: e1000355.https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1000355.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 70.

    Ваддепалли П., Фултон Л., Виланд Дж., Вассмер К., Шеффер М., Ранф С. и др. Локализованная в клеточной стенке атипичная β-1,3-глюканаза ZERZAUST контролирует морфогенез тканей у Arabidopsis thaliana . Разработка. 2017; 144: 2259–69. https://doi.org/10.1242/dev.152231.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 71.

    Gao J, Chaudhary A, Vaddepalli P, Nagel M-K, Isono E, Schneitz K. Рецепторная киназа арабидопсиса STRUBBELIG претерпевает клатрин-зависимый эндоцитоз. J Exp Bot. 2019; 70: 3881–94. https://doi.org/10.1093/jxb/erz190.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 72.

    Sieburth LE, Meyerowitz EM. Молекулярное рассечение контрольной области AGAMOUS показывает, что цис-элементы для пространственной регуляции расположены внутригенно.Растительная клетка. 1997. 9: 355–65. https://doi.org/10.1105/tpc.9.3.355.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 73.

    Энугутти Б., Эльшнер М., Шнайц К. Микроскопический анализ развития семяпочек у Arabidopsis thaliana . Методы Мол биол. 2013; 959: 127–35. https://doi.org/10.1007/978-1-62703-221-6_7.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 74.

    Christensen CA, King EJ, Jordan JR, Drews GN. Мегагаметогенез у Arabidopsis дикого типа и мутанта Gf. Половое растение Reprod. 1997; 10: 49–64. https://doi.org/10.1007/s004970050067.

    Артикул Google Scholar

  • 75.

    Бенкова Е., Мичневич М., Зауэр М., Тейхманн Т., Зейфертова Д., Юргенс Г. и др. Локальные, зависящие от оттока градиенты ауксина как общий модуль формирования органов растений. Клетка. 2003; 115: 591–602. https://doi.

  • Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.